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P53在不同高温条件下相反作用的分子机制研究

摘要第6-7页
Abstract第7-8页
缩略词表第9-14页
第1章 前言第14-40页
    1.1 抑癌基因P53第14-26页
        1.1.1 P53的激活与功能第14-17页
        1.1.2 P53蛋白的结构与修饰第17-21页
        1.1.3 P53异构体与P53蛋白家族第21-26页
    1.2 热中暑第26-33页
        1.2.1 热休克蛋白HSP90第27-29页
        1.2.2 热休克转录因子HSF1第29-32页
        1.2.3 热处理与ATM激活第32-33页
    1.3 分子伴侣介导的自噬(CMA)第33-37页
        1.3.1 CMA信号通路第34-35页
        1.3.2 CMA的功能第35-36页
        1.3.3 CMA相关的疾病第36-37页
    1.4 本课题研究的背景、内容和目的第37-40页
第2章 材料与方法第40-58页
    2.1 斑马鱼体系实验操作第40-41页
        2.1.1 斑马鱼的品系及饲养第40页
        2.1.2 斑马鱼的交配及受精卵的获取第40页
        2.1.3 斑马鱼胚胎的热激处理第40-41页
        2.1.4 斑马鱼胚胎存活率分析第41页
    2.2 人类细胞系实验操作第41-44页
        2.2.1 细胞系的常规培养第41页
        2.2.2 细胞传代第41页
        2.2.3 细胞冻存与复苏第41页
        2.2.4 细胞转染第41-42页
        2.2.5 慢病毒的包装第42-44页
        2.2.6 Annexin V-FITC细胞凋亡检测第44页
        2.2.7 细胞活性测定(MTT)第44页
    2.3 DNA实验操作方法第44-48页
        2.3.1 分子克隆第44-46页
        2.3.2 DNA测序反应第46页
        2.3.3 质粒的提取第46-47页
        2.3.4 基因组DNA的提取第47-48页
    2.4 RNA实验操作方法第48-49页
        2.4.1 总RNA的提取第48页
        2.4.2 DNase Ⅰ处理总RNA第48页
        2.4.3 RNA逆转录成cDNA第48-49页
        2.4.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)第49页
    2.5 蛋白实验操作方法第49-52页
        2.5.1 总蛋白的提取第49页
        2.5.2 蛋白质印迹第49-52页
    2.6 实验中所用化学试剂及相关溶液配方总述第52-58页
        2.6.1 常规试剂配方列表第52-53页
        2.6.2 不同浓度聚丙烯酰胺凝胶配方第53-54页
        2.6.3 实验中所用抗体列表第54-55页
        2.6.4 实验中所用siRNA列表第55页
        2.6.5 实验中所用qPCR引物列表第55页
        2.6.6 实验中克隆和鉴定引物列表第55-58页
第3章 过表达HSC70增加结肠癌细胞对外界胁迫的敏感性第58-63页
    3.1 建立HSC70稳定表达细胞系第58页
    3.2 HSC70稳定表达细胞系对于外界胁迫更加敏感第58-60页
    3.3 在HSC70稳定表达细胞系中敲低HSC70降低对于低糖压力的敏感性第60-61页
    3.4 小结和讨论第61-63页
第4章 P53在40℃和43℃高温条件下不同作用的分子机制第63-76页
    4.1 P53野生型细胞系比P53缺陷细胞系对于43℃高温更敏感第63-64页
    4.2 在43℃条件下P53不影响CMA基因表达而促进凋亡基因表达第64-67页
    4.3 在43℃条件下ATM被激活并伴随P53 ser6的磷酸化第67-69页
    4.4 敲低ATM降低P53野生型细胞系在43℃条件下的细胞凋亡第69-70页
    4.5 在40℃条件下P53促进细胞存活不依赖于ATM第70-72页
    4.6 在40℃条件下P53促进细胞存活依赖于HSP90第72-74页
    4.7 小结和讨论第74-76页
第5章 总结与讨论第76-80页
    5.1 结论第76-77页
    5.2 讨论第77-80页
参考文献第80-88页
作者简介第88-90页
致谢第90-91页

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