| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 羰基还原酶不对称催化合成芳基手性醇 | 第9-10页 |
| 1.1.1 羰基还原酶 | 第9页 |
| 1.1.2 羰基还原酶催化转化制备手性醇 | 第9-10页 |
| 1.1.3 羰基还原酶制备手性醇存在的问题 | 第10页 |
| 1.2 构建辅酶再生策略 | 第10-11页 |
| 1.3 固定化酶技术提高酶催化效率 | 第11-14页 |
| 1.3.1 固定化优势 | 第11-12页 |
| 1.3.2 固定化方式 | 第12-13页 |
| 1.3.3 新型纳米材料作为固定化酶载体 | 第13页 |
| 1.3.4 多种氧化还原酶的固定化 | 第13-14页 |
| 1.4 论文的研究意义和内容 | 第14-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 菌株与质粒 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第17页 |
| 2.1.4 实验所需培养基和相关溶液 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-23页 |
| 2.2.1 (S)-羰基还原酶Ⅱ和葡萄糖脱氢酶共催化转化(S)-苯乙二醇 | 第17-19页 |
| 2.2.2 双酶共表达及融合表达体系的构建 | 第19-20页 |
| 2.2.3 双酶共表达体系的生物催化 | 第20页 |
| 2.2.4 介孔ZnO/C复合纳米材料的合成 | 第20页 |
| 2.2.5 介孔ZnO/C复合纳米材料固定化融合酶SCRII-GDH | 第20-21页 |
| 2.2.6 固定化融合酶SCRII-GDH催化转化(S)-苯乙二醇 | 第21-23页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第23-38页 |
| 3.1 (S)-羰基还原酶II和葡萄糖脱氢酶共催化转化(S)-苯乙二醇 | 第23-27页 |
| 3.1.1 SCRII和GDH纯化及二者酶活比较 | 第23页 |
| 3.1.2 SCRII和GDH共催化转化(S)-苯乙二醇的最佳酶活比例 | 第23-24页 |
| 3.1.3 双酶体系共催化转化(S)-苯乙二醇的最适温度和pH | 第24-25页 |
| 3.1.4 SCRII和GDH共表达及融合表达体系的构建和全细胞催化转化(S)-苯乙二醇 | 第25-27页 |
| 3.2 介孔ZnO/C复合纳米材料固定化融合酶SCRII-GDH | 第27-32页 |
| 3.2.1 蛋白纯化获得电泳纯酶 | 第28页 |
| 3.2.2 固定化融合酶SCRII-GDH | 第28-30页 |
| 3.2.3 XRD、TEM和FTIR对介孔ZnO/C复合纳米材料及固定化酶进行表征分析 | 第30-32页 |
| 3.3 固定化融合酶SCRII-GDH催化转化(S)-苯乙二醇 | 第32-38页 |
| 3.3.1 固定化酶不对称转化 2-羟基苯乙酮功能验证 | 第32页 |
| 3.3.2 固定化SCRII-GDH催化转化(S)-苯乙二醇的最适温度和热稳定性 | 第32-33页 |
| 3.3.3 固定化SCRII-GDH催化转化(S)-苯乙二醇的最适pH和pH稳定性 | 第33-35页 |
| 3.3.4 固定化SCRII-GDH的多批次使用性能 | 第35页 |
| 3.3.5 固定化SCRII-GDH催化高浓度底物 2-羟基苯乙酮 | 第35-36页 |
| 3.3.6 固定化SCRII-GDH双相反应体系催化转化(S)-苯乙二醇 | 第36-37页 |
| 3.3.7 固定化SCRII-GDH的储存稳定性 | 第37-38页 |
| 主要结论与展望 | 第38-39页 |
| 主要结论 | 第38页 |
| 展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第44页 |
