| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 前言 | 第14-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第14页 |
| 1.2 骨性关节炎进展的评价方法 | 第14-15页 |
| 1.3 BMP-2 与骨性关节炎的关系 | 第15-16页 |
| 1.4 ERCC1与骨性关节炎的关系 | 第16-17页 |
| 1.5 TGF-β 与骨性关节炎的关系 | 第17-19页 |
| 1.6 Sox9与骨性关节炎的关系 | 第19-22页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第22-38页 |
| 2.1 实验对象 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验对象及样本 | 第22-23页 |
| 2.1.2 放射线OA分级标准 | 第23-24页 |
| 2.1.3 症状严重程度评估 | 第24页 |
| 2.2 材料方法 | 第24-35页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.2 BMP2质粒构建 | 第25-27页 |
| 2.2.3 细胞形态检测 | 第27页 |
| 2.2.4 Elisa检测II型胶原蛋白 | 第27-28页 |
| 2.2.5 流式检测细胞凋亡 | 第28-29页 |
| 2.2.6 荧光定量的检测 | 第29-32页 |
| 2.2.7 Westernblot检测 | 第32-34页 |
| 2.2.8 CCK8增殖检测 | 第34-35页 |
| 2.2.9 血清及滑液中ELISA BMP-2 浓度 | 第35页 |
| 2.3 统计学分析 | 第35-38页 |
| 第3章 实验结果 | 第38-50页 |
| 3.1 BMP2重组质粒的构建（BMP2是直接合成） | 第38-39页 |
| 3.1.1 合成的BMP2基因PCR结果（Figure1） | 第38页 |
| 3.1.2 BMP2重组质粒PCR鉴定结果（Figure2） | 第38-39页 |
| 3.1.3 BMP2重组质粒酶切鉴定结果（Figure3） | 第39页 |
| 3.2 重组BMP2基因对II型胶原蛋白表达情况的作用(Figure4) | 第39-40页 |
| 3.3 重组 BMP2 基因对相关基因的调控作用 | 第40-41页 |
| 3.3.1 重组 BMP2 基因对 ERCC1、TGFβ、Sox9 基因转录的调控作用(Figure5) | 第40页 |
| 3.3.2 重组 BMP2 基因对 ERCC1、TGFβ、Sox9 基因翻译的调控作用(Figure6)| | 第40-41页 |
| 3.4 重组BMP2基因对细胞生长的调控作用 | 第41-44页 |
| 3.4.1 重组BMP-2 基因转染前后细胞形态观察(Figure7) | 第41-42页 |
| 3.4.2 CCK8增殖检测(Figure8) | 第42-43页 |
| 3.4.3 BMP-2 转染前后软骨细胞凋亡情况（Figure9） | 第43-44页 |
| 3.5 BMP-2 在血清及滑液中表达的意义 | 第44-50页 |
| 3.5.1 实验组与对照组一般资料 | 第44页 |
| 3.5.2 血清和SF中BMP-2 的浓度 | 第44-46页 |
| 3.5.3 血清和滑液中BMP-2 表达水平与KL分级的关系 | 第46-47页 |
| 3.5.4 血清和滑液中BMP-2 表达水平与WOMAC评分的关系 | 第47-50页 |
| 第4章 讨论 | 第50-58页 |
| 参考文献 | 第58-70页 |
| 结论 | 第70-72页 |
| 综述 | 第72-98页 |
| 参考文献 | 第84-98页 |
| 作者简介及在读期间科研成果 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99页 |
