摘要 | 第1-3页 |
ABSTRACT | 第3-9页 |
第1章 文献综述 | 第9-21页 |
·卢氏鸡和固始鸡简介 | 第9-11页 |
·鸡输卵管的组成 | 第11页 |
·蛋壳的形成 | 第11-12页 |
·蛋壳颜色的形成及其研究进展 | 第12-13页 |
·血红素加氧酶(heme oxygenase, HO) | 第13-14页 |
·胆绿素还原酶(Biliverdin Reductase,BLVR) | 第14-16页 |
·胆绿素还原酶的主要功能 | 第15-16页 |
·胆绿素还原酶酶学特性 | 第16页 |
·实时荧光定量 PCR | 第16-18页 |
·实时荧光定量 PCR 的特点 | 第16-17页 |
·实时荧光定量 PCR 的原理 | 第17页 |
·实时荧光定量 PCR 技术的实验方法 | 第17页 |
·实时荧光定量 PCR 技术的局限性 | 第17-18页 |
·mRNA 差异显示技术的原理、方法、优缺点及应用 | 第18-19页 |
·研究的目的和意义 | 第19-21页 |
第2章 卢氏鸡、固始鸡 HO-1 和 BLVRA 基因表达量对蛋壳颜色的影响 | 第21-43页 |
·试验材料 | 第21-23页 |
·动物材料采集 | 第21页 |
·主要试剂 | 第21-22页 |
·主要实验仪器 | 第22页 |
·常用溶液的配制 | 第22-23页 |
·试验方法 | 第23-31页 |
·试验的技术路线 | 第23-24页 |
·RNA 提取准备工作 | 第24页 |
·总 RNA 的提取 | 第24页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测提取的 RNA 产物 | 第24-25页 |
·总 RNA 逆转录合成 cDNA | 第25页 |
·聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第25-28页 |
·卢氏鸡和固始鸡子宫部组织中的 HO-1 和 BLVRA 实时荧光定量 PCR | 第28-30页 |
·统计学分析数据 | 第30-31页 |
·结果 | 第31-38页 |
·提取的总 RNA 样品质量检测结果 | 第31页 |
·反转录 cDNA 结果 | 第31-32页 |
·卢氏鸡和固始鸡子宫部组织中的 HO-1 和 BLVRA 的 RT-PCR 扩增结果 | 第32-34页 |
·卢氏鸡和固始鸡子宫部组织中的 HO-1 和 BLVRA 实时荧光定量 PCR结果 | 第34-36页 |
·卢氏鸡和固始鸡子宫部组织中的 HO-1 和 BLVRA 相对表达量 | 第36-37页 |
·HO-1 和 BLVRA 在卢氏鸡和固始鸡表达量差异比较 | 第37-38页 |
·试验分析 | 第38-40页 |
·RNA 的提取 | 第38页 |
·引物设计 | 第38-39页 |
·HO-1 和 BLVRA 的 PT-PCR 扩增 | 第39页 |
·实时荧光定量 PCR 程序的建立 | 第39-40页 |
·实时荧光定量 PCR 问题解决 | 第40页 |
·小结 | 第40-43页 |
第3章 绿壳蛋鸡输卵组织 mRNA 差异分析 | 第43-55页 |
·实验材料 | 第43-44页 |
·动物材料采集 | 第43页 |
·主要试剂 | 第43页 |
·主要实验仪器 | 第43-44页 |
·常用溶液的配制 | 第44页 |
·试验方法 | 第44-51页 |
·技术路线 | 第44-45页 |
·引物的设计 | 第45页 |
·RNA 提取准备工作 | 第45页 |
·总 RNA 的提取 | 第45-46页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测提取的 RNA 产物 | 第46页 |
·总 RNA 逆转录合成 cDNA | 第46-47页 |
·差异显示 PCR | 第47-49页 |
·10%非变性聚丙烯酰胺电泳及银染 | 第49-50页 |
·二次 PCR 扩增 | 第50-51页 |
·结果 | 第51-53页 |
·提取的总 RNA 样品质量检测结果 | 第51页 |
·反转录 cDNA 结果 | 第51-52页 |
·DDRT-PCR 检测结果 | 第52页 |
·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测结果 | 第52-53页 |
·差异条带回收、二次 PCR 扩增以及检测 | 第53页 |
·分析讨论 | 第53-55页 |
第4章 结论 | 第55-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
实时荧光定量 PCR 的数据 | 第62-63页 |
HO-1 标注曲线电子数据表格 | 第63-64页 |
BLVRA 标注曲线电子数据表格 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第66页 |