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口服胰岛素生物粘附纳米给药系统的研究

中文摘要第1-16页
英文摘要第16-19页
缩略语表第19-20页
前言第20-34页
 参考文献第28-34页
第一章 Eul-cys偶联物的合成与表征第34-50页
 1 仪器与材料第34页
 2 实验方法第34-37页
   ·Eul-cys偶联物的合成第34-35页
   ·Eul-cys偶联物的表征第35-36页
     ·核磁共振氢谱(~1H-NMR)第35页
     ·傅里叶变换红外光谱(FT-IR)第35页
     ·差示扫描量热法(DSC)第35-36页
   ·偶联物自由巯基及二硫键的含量测定第36页
   ·偶联物的形态第36页
   ·偶联物的溶解性考察第36页
   ·偶联物巯基的稳定性第36页
   ·偶联物的溶胀度第36-37页
   ·偶联物的流变学性质第37页
 3 结果与讨论第37-48页
   ·Eul-cys偶联物的合成第37-38页
   ·Eul-cys偶联物的表征第38-42页
     ·核磁(~1H-NMR)第38-41页
     ·傅里叶变换红外光谱(FT-IR)第41页
     ·差示扫描量热法(DSC)第41-42页
   ·偶联物自由巯基及二硫键的含量测定第42-43页
   ·形态观察第43-44页
   ·溶解性考察第44页
   ·巯基的稳定性第44-45页
   ·溶胀度考察第45-47页
   ·流变学性质第47-48页
 4 本章小结第48-49页
 参考文献第49-50页
第二章 载胰岛素的Eul-cys纳米粒的制备及评价第50-76页
 1 仪器与材料第50-51页
 2 实验方法第51-56页
   ·偶联物的pH敏感性考察第51页
   ·胰岛素的含量测定第51页
   ·载药纳米粒的制备及表征第51-52页
     ·纳米粒的制备第51-52页
     ·粒径、电位、包封率与载药量第52页
   ·纳米粒制备的影响因素考察第52页
     ·pH值第52页
     ·载体与药物的质量比第52页
     ·超声时间第52页
     ·孵育时间第52页
   ·纳米粒的冻干第52-53页
     ·冻干曲线第52-53页
     ·冻干保护剂的选择及用量考察第53页
   ·纳米粒的外观形态第53页
     ·外观第53页
     ·透射电镜(TEM)第53页
   ·体外释放第53-54页
   ·胰岛素的生物活性测定第54页
     ·圆二色谱(CD)第54页
     ·小鼠降血糖实验第54页
   ·大鼠离体小肠生物粘附性第54-55页
     ·6-氨基荧光素(6-AF)标记Eul-cys和Eul的制备第54页
     ·荧光标记的Eul-cys和Eul纳米粒的制备第54页
     ·生物粘附性测定第54-55页
   ·糖尿病大鼠降血糖实验第55页
     ·糖尿病模型建立第55页
     ·口服降血糖效果第55页
   ·生物相容性第55-56页
 3 结果与讨论第56-71页
   ·偶联物的pH敏感性考察第56-58页
     ·pH值对Eul-cys偶联物粒径和电位的影响第56-57页
     ·透射电镜(TEM)第57-58页
   ·胰岛素的标准曲线第58-59页
   ·载药纳米粒的制备第59-60页
   ·纳米粒制备的影响因素考察第60-62页
     ·pH值第60页
     ·载体与药物的质量比第60-61页
     ·超声时间第61页
     ·孵育时间第61页
     ·制备工艺的确定第61-62页
   ·纳米粒的冻干第62-63页
     ·冻干保护剂的选择第62页
     ·冻干保护剂的用量考察第62-63页
   ·纳米粒的外观形态第63-64页
     ·外观第63页
     ·透射电镜(TEM)第63-64页
   ·体外释放第64-66页
   ·胰岛素生物活性的测定第66-68页
     ·圆二色谱(CD)第66-67页
     ·小鼠降血糖实验第67-68页
   ·离体大鼠小肠生物粘附性第68-69页
   ·糖尿病大鼠降血糖实验第69-71页
   ·生物相容性第71页
 4 本章小结第71-73页
 参考文献第73-76页
第三章 载胰岛素的Eul-cys/GSH纳米粒的制备及评价第76-90页
 1 仪器与材料第76-77页
 2 实验方法第77-79页
   ·Eul-cys/GSH纳米粒的制备第77页
   ·GSH对生物粘附性的影响第77页
     ·6-AF标记Eul-cys/GSH纳米粒(6-AF-Eul-cys/GSH NPs)的制备第77页
     ·生物粘附性的测定第77页
   ·纳米粒的表征第77-78页
     ·粒径、电位第77页
     ·形态第77-78页
       ·透射电镜(TEM)第77页
       ·原子力显微镜(AFM)第77-78页
     ·疏基含量测定第78页
     ·包封率与载药量第78页
   ·insulin和GSH的体外释放第78页
   ·在体药物释放第78-79页
     ·FITC标记胰岛素第78页
     ·标准曲线的制备第78-79页
     ·在体药物释放第79页
   ·大鼠小肠离体转运第79页
   ·正常大鼠回肠给药降血糖实验第79页
 3 结果与讨论第79-86页
   ·Eul-cys纳米粒制备示意图第79-80页
   ·GSH对生物粘附性的影响第80-81页
   ·纳米粒的表征第81-82页
   ·insulin和GSH体外释放第82-83页
   ·在体药物释放第83-84页
   ·大鼠小肠离体转运第84-85页
   ·正常大鼠回肠给药降血糖实验第85-86页
 4 本章小结第86-88页
 参考文献第88-90页
第四章 药物在纳米粒中的存在状态及与载体的相互作用第90-100页
 1 仪器与材料第90页
 2 实验方法第90-91页
   ·胰岛素的存在状态第90-91页
     ·X射线衍射(XRD)第90页
     ·X射线光电子能谱(XPS)第90-91页
   ·药物与载体的相互作用第91页
     ·差示扫描量热法(DSC)第91页
     ·红外光谱(FT-IR)第91页
 3 结果与讨论第91-97页
   ·胰岛素的存在状态第91-94页
     ·X射线衍射(XRD)第91-92页
     ·X射线光电子能谱(XPS)第92-94页
   ·药物与载体的相互作用第94-97页
     ·差示扫描量热法(DSC)第94-95页
     ·红外光谱(FT-IR)第95-97页
 4 本章小结第97-99页
 参考文献第99-100页
第五章 巯基纳米粒子促进胰岛素口服吸收机制的研究第100-124页
 1 仪器与材料第100-101页
 2 实验方法第101-104页
   ·钙离子结合实验第101页
   ·蛋白酶抑制实验第101页
   ·细胞实验第101-104页
     ·培养条件第101-102页
     ·细胞毒实验第102页
       ·MTT实验第102页
       ·LDH释放第102页
     ·跨膜电阻(TEER)值第102-103页
     ·跨细胞转运第103页
       ·在单细胞和共育细胞中的转运第103页
       ·共育细胞粘附层消除对转运的影响第103页
     ·载体对两种细胞的粘附第103-104页
     ·免疫荧光第104页
   ·大鼠小肠粘附(CLSM)第104页
 3 结果与讨论第104-119页
   ·钙离子结合实验第104-105页
   ·蛋白酶抑制实验第105-106页
   ·细胞实验第106-118页
     ·模型细胞的选择第106-107页
     ·细胞毒实验第107-108页
       ·MTT实验第107-108页
       ·LDH释放第108页
     ·跨膜电阻值第108-111页
     ·跨细胞转运第111-114页
     ·载体对两种细胞的粘附第114-116页
     ·免疫荧光第116-118页
   ·大鼠小肠粘附(CLSM)第118-119页
 4 本章小结第119-121页
 参考文献第121-124页
全文结论第124-126页
创新点与展望第126-128页
致谢第128-130页
攻读学位期间发表论文情况第130-131页
附件第131-140页

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