| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 插图和附表清单 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| ·肉质果实的成熟及调控 | 第11-16页 |
| ·果实的成熟类型 | 第11页 |
| ·果实成熟过程中乙烯的合成及信号转导 | 第11-12页 |
| ·色素的积累 | 第12-15页 |
| ·果实的质地和软化 | 第15-16页 |
| ·脱落酸的代谢及其对果实成熟的影响 | 第16-21页 |
| ·ABA的从头合成途径 | 第16-18页 |
| ·ABA的分解代谢 | 第18-19页 |
| ·ABA的糖结合途径 | 第19-20页 |
| ·ABA对果实成熟的影响 | 第20-21页 |
| ·植物中的糖基转移酶 | 第21-22页 |
| ·高等植物糖基转移酶基因家族 | 第21页 |
| ·UGT基因对激素代谢的调节 | 第21-22页 |
| ·UGTs基因对果实品质的影响 | 第22页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第23-45页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·菌体材料及载体 | 第23页 |
| ·酶及试剂 | 第23-24页 |
| ·实验主要仪器 | 第24页 |
| ·常用培养基和溶液配制 | 第24-25页 |
| ·常用培养基及配制 | 第24页 |
| ·常用溶液配制 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-45页 |
| ·生物信息学分析和系统发育树的构建 | 第25页 |
| ·所用分子生物学方法 | 第25-30页 |
| ·实时定量PCR | 第30-32页 |
| ·ABA的提取和含量测定 | 第32-34页 |
| ·外源激素处理 | 第34-35页 |
| ·非生物胁迫处理 | 第35页 |
| ·病毒诱导的基因沉默(Virus-induced gene silencing,VIGS) | 第35-37页 |
| ·亚细胞定位 | 第37-38页 |
| ·原核表达 | 第38-43页 |
| ·纯化蛋白的酶活性分析 | 第43-45页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第45-81页 |
| ·草莓中ABA合成代谢关键酶NCED2和CYP707A1通过ABA影响果实成熟 | 第45-53页 |
| ·草莓果实成熟过程中ABA含量的变化 | 第45-46页 |
| ·草莓FaNCED2和FaCYP707A1是ABA合成代谢关键酶基因 | 第46-49页 |
| ·FaNCED1、FaNCED2和FaCYP707A1在草莓果实中的表达具有时空特异性 | 第49-52页 |
| ·生长素负调控FaNCED1、FaNCED2和FaCYP707A1在草莓果实中的表达 | 第52-53页 |
| ·草莓葡糖基转移酶基因参与果实成熟 | 第53-66页 |
| ·草莓葡糖基转移酶基因的获得 | 第53-60页 |
| ·18个葡糖基转移酶在草莓成熟过程中的表达情况 | 第60-62页 |
| ·草莓葡糖基转移酶对生长素类似物萘乙酸和脱落酸处理的响应 | 第62-63页 |
| ·FaGT1和FaGT2的基因沉默影响草莓果实的成熟 | 第63-66页 |
| ·ABA糖结合途径在番茄果实成熟过程的作用 | 第66-81页 |
| ·SlUGT75C1、SlUGT73C4、SlUGT76E1是番茄果实成熟过程中3个表达量最高的葡糖基转移酶基因 | 第66-69页 |
| ·三个选定的葡糖基转移酶基因在番茄果实成熟过程中的表达 | 第69-72页 |
| ·不同激素处理和非生物胁迫对三个选定基因的影响 | 第72-74页 |
| ·SlUGT75C1基因沉默引起果实成熟的异常 | 第74-75页 |
| ·SlUGT75C1、SlUGT73C4和SlUGT76E1的亚细胞定位 | 第75-76页 |
| ·SlUGT75C1、SlUGT73C4和SlUGT76E1的生物信息学分析 | 第76-77页 |
| ·SlUGT75C1对ABA和IAA有催化活性 | 第77-81页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第81-84页 |
| ·讨论 | 第81-83页 |
| ·糖基转移酶的确定及其在果实成熟过程中的表达模式 | 第81-82页 |
| ·葡糖基转移酶基因的沉默导致果实成熟出现异常 | 第82页 |
| ·SlUGT75C1重组蛋白对ABA和IAA的催化活性 | 第82-83页 |
| ·结论 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 作者简历 | 第95页 |
