| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-34页 |
| 1 重离子治疗肿瘤的优越性和前景 | 第12-15页 |
| ·重离子束辐照剂量的精确分布 | 第13-14页 |
| ·重离子束辐照氧效应 | 第14页 |
| ·重离子束辐照的生物学效应 | 第14-15页 |
| ·重离子束辐照细胞周期的影响 | 第15页 |
| 2 重离子临床研究现状 | 第15-17页 |
| 3 我国重离子医学研究现状 | 第17-18页 |
| 4 CASPASE功能研究 | 第18-32页 |
| ·Caspase与肿瘤的关系 | 第18页 |
| ·Caspase与细胞凋亡的关系 | 第18-21页 |
| ·Caspase-3在肿瘤治疗中的作用 | 第21-23页 |
| ·Caspase-3与Bcl-2家族相互作用 | 第23-25页 |
| ·Caspase抑制剂的研究进展 | 第25-26页 |
| ·电离辐照与细胞凋亡 | 第26-32页 |
| ·辐照敏感性与凋亡机制 | 第32页 |
| 5 选题的目的及意义 | 第32-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-42页 |
| 1 研究对象 | 第34页 |
| ·细胞株 | 第34页 |
| ·细胞的复苏与传代 | 第34页 |
| 2 实验方法 | 第34-42页 |
| ·细胞辐照 | 第34-35页 |
| ·实验分组 | 第35页 |
| ·荧光显微镜下观察细胞形态学变化 | 第35-36页 |
| ·细胞周期的测定 | 第36页 |
| ·细胞增殖抑制实验 | 第36页 |
| ·流式细胞技术(FCM)检测细胞凋亡 | 第36页 |
| ·Caspase-3酶活性的测定 | 第36-37页 |
| ·Caspase-3活性抑制实验 | 第37页 |
| ·免疫组化法检测相关凋亡蛋白的表达 | 第37-38页 |
| ·Western Blotting法检测~(12)C~(6+)辐照后Caspase-3蛋白的表达 | 第38-39页 |
| ·RT-PCR检测Caspase-3 mRNA基因表达 | 第39-42页 |
| 第三章 结果 | 第42-56页 |
| 1 H1299细胞形态学改变 | 第42-44页 |
| 2 ~(12)C~(6+)辐照对H1299细胞周期的影响 | 第44-45页 |
| 3 ~(12)C~(6+)对H1299细胞增殖的影响 | 第45-47页 |
| 4 流式细胞技术(FCM)检测细胞凋亡 | 第47页 |
| 5 CASPASE-3酶活性影响 | 第47-48页 |
| 6 CASPASE-3活性抑制实验 | 第48-49页 |
| 7 免疫组化法检测相关凋亡蛋白的表达 | 第49-53页 |
| ·Caspase-3蛋白免疫组化检测结果 | 第49-50页 |
| ·Caspase-9蛋白免疫组化检测结果 | 第50-51页 |
| ·Bcl-2蛋白免疫组化检测结果 | 第51-52页 |
| ·Bax蛋白免疫组化检测结果 | 第52-53页 |
| ·~(12)C~(6+)辐照H1299细胞24h后Bcl-2/Bax蛋白比值 | 第53页 |
| 8 WESTERN BLOTTING检测CASPASE-3蛋白的表达 | 第53-54页 |
| 9 RT-PCR检测CASPASE-3 MRNA表达水平 | 第54-56页 |
| 第四章 讨论 | 第56-68页 |
| 1 重离子诱导H1299细胞出现凋亡现象 | 第57-59页 |
| 2 重离子抑制H1299细胞增值 | 第59-60页 |
| 3 CASPASE-3参与了细胞调控通路 | 第60-63页 |
| 4 BCL-2参与了CASPASE-3介导的细胞增值与凋亡调控 | 第63-65页 |
| 5 非P53通道肿瘤细胞凋亡机制 | 第65-68页 |
| 第五章 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 在读期间的科研成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
