| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| ·哺乳动物体细胞核移植研究进展 | 第11-13页 |
| ·体细胞核移植研究历史 | 第11页 |
| ·体细胞核移植的研究意义 | 第11-12页 |
| ·体细胞核移植研究中存在的问题 | 第12-13页 |
| ·哺乳动物表观遗传重编程研究进展 | 第13-17页 |
| ·表观遗传概述 | 第13页 |
| ·DNA 甲基化 | 第13-14页 |
| ·组蛋白乙酰化修饰 | 第14-15页 |
| ·DNA 甲基化与组蛋白乙酰化的关系 | 第15-16页 |
| ·甲基转移酶抑制剂 5-Aza-Cdr 概述 | 第16页 |
| ·组蛋白去乙酰化酶抑制剂 TSA 概述 | 第16-17页 |
| ·几种与胚胎发育相关的基因的研究进展 | 第17-20页 |
| ·几个与胚胎发育多能性相关的基因概述 | 第17-19页 |
| ·两个凋亡相关基因概述 | 第19-20页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·仪器设备及耗材 | 第21页 |
| ·主要药品 | 第21-22页 |
| ·主要溶液的配制 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-27页 |
| ·卵母细胞的成熟培养 | 第22-23页 |
| ·卵母细胞的孤雌激活 | 第23页 |
| ·胚胎培养 | 第23页 |
| ·囊胚细胞计数 | 第23-24页 |
| ·囊胚总 RNA 的提取 | 第24页 |
| ·RT-PCR 反应及 cDNA 质量检测 | 第24-25页 |
| ·Realtime PCR 引物的设计与合成 | 第25-26页 |
| ·Realtime PCR 检测 | 第26-27页 |
| ·实验设计 | 第27-28页 |
| ·不同浓度的 TSA 对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第27页 |
| ·不同浓度的 5-Aza-Cdr 对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第27页 |
| ·TSA 联合不同浓度 5-Aza-Cdr 对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第27-28页 |
| ·TSA 和 5-Aza-Cdr 处理对 OCT4、Nanog、Bcl-2 和 BAX 基因在囊胚中表达量的检测 | 第28页 |
| ·数据分析 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-36页 |
| ·不同浓度的 TSA 对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第29-30页 |
| ·不同浓度 5-Aza-Cdr 对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第30-31页 |
| ·TSA 和 5-Aza-Cdr 联合处理对猪孤雌胚胎发育能力的影响 | 第31-32页 |
| ·总 RNA 质量检测 | 第32页 |
| ·TSA 以及 5-Aza-Cdr 处理对 OCT4、Nanog、Bcl-2 以及 BAX 表达量的影响 | 第32-36页 |
| ·cDNA 质量检测 | 第32页 |
| ·Realtime PCR 引物质量检测 | 第32-34页 |
| ·TSA 处理对 OCT4、Nanog、Bcl-2 以及 BAX 表达量的影响 | 第34-35页 |
| ·5-Aza-Cdr 处理对 OCT4、Nanog、Bcl-2 以及 BAX 表达量的影响 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-39页 |
| ·TSA 影响猪孤雌激活胚胎发育 | 第36页 |
| ·5-Aza-Cdr 影响猪孤雌激活胚胎发育 | 第36-37页 |
| ·TSA 联合 5-Aza-Cdr 影响猪孤雌激活胚胎的发育 | 第37页 |
| ·TSA 和 5-Aza-Cdr 处理影响基因表达 | 第37-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第47页 |
