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PotD、TldD蛋白及谷氨酰胺合成酶的差异表达对大肠杆菌BL21(DE3)及恶臭假单胞菌F1生物膜生成的影响

摘要第1-12页
ABSTRACT第12-16页
缩略词表第16-17页
第一章 前言第17-38页
   ·生物膜的结构第17-18页
   ·生物膜的形成对微生物的影响第18-20页
     ·为细菌抵抗外界环境提供保护第18-19页
     ·获取营养物质并进行协同代谢第19页
     ·帮助细菌获得新的遗传物质第19-20页
   ·生物膜的形成过程及其影响因素第20-23页
     ·生物膜的形成过程第20-21页
     ·生物膜形成的影响因素第21页
     ·密度感应系统(Quorum sensing)第21-22页
     ·生物膜形成过程中基因差异表达第22-23页
   ·生物膜研究的应用前景第23-25页
     ·生物膜与相关疾病的治疗第23-24页
     ·生物膜在污染物降解中的应用第24-25页
   ·恶臭假单胞菌与单环芳烃的降解第25-27页
   ·腐胺的性质、作用及体内代谢途径第27-29页
     ·腐胺的性质及结构第27-28页
     ·腐胺的分布及作用第28页
     ·腐胺的体内代谢途径第28-29页
     ·腐胺转运蛋白系统第29页
   ·TldD蛋白第29-30页
     ·TldD与小菌素B17第29页
     ·TldD蛋白与ccdAB系统第29-30页
     ·TldD的蛋白酶活性第30页
   ·谷氨酰胺的性质、作用及合成途径第30-32页
     ·谷氨酰胺的性质及结构第30页
     ·谷氨酰胺的分布及作用第30-31页
     ·谷氨酰胺的合成途径第31-32页
   ·谷氨酰胺合成酶第32-35页
     ·谷氨酰胺合成酶的性质、作用第32-33页
     ·谷氨酰胺合成酶的分类第33页
     ·谷氨酰胺合成酶的调控第33-34页
     ·谷氨酰胺合成酶的酶活测定方法第34-35页
   ·SOS系统第35-37页
   ·本课题立题依据及主要内容第37-38页
第二章 单环芳烃降解相关蛋白质在Pseudomonas putida F1利用不同碳源时的差异表达第38-49页
   ·材料与方法第38-41页
     ·材料第38-39页
     ·方法第39-41页
   ·结果与讨论第41-48页
     ·细菌在不同碳源中的生长第41-42页
     ·蛋白质双向电泳图谱第42-45页
     ·MALDI-TOF质谱分析第45-48页
   ·本章小结第48-49页
第三章 Escherichia coli中PotD蛋白的过量减量表达及其对生物膜形成的影响第49-91页
   ·材料与方法第51-67页
     ·材料第51-54页
       ·菌株质粒及遗传特性第51-53页
       ·主要试剂及培养基第53-54页
     ·方法第54-67页
       ·CTAB法提取E.coli BL21(DE3)基因组DNA第54-55页
       ·PCR扩增E. coli BL21(DE3)potD基因第55-56页
       ·载体pET26b(+)-fpotD和pET26b(+)-ipotD的构建第56-57页
       ·载体pET26b(+)-fpotD、pET26b(+)-ipotD的转化及重组子的验证第57-58页
       ·重组菌诱导表达及SDS-PAGE分析第58页
       ·蛋白纯化及抗体制备第58-59页
       ·Western Blotting第59页
       ·λ-RED同源重组技术敲除potD基因第59-63页
       ·恒流器培养 Escherichia coli BL21(DE3)形成生物膜第63-64页
       ·游离态菌的生长曲线的测定第64页
       ·RNA提取和反转录第64-66页
       ·RT-PCR定量分析生物膜中SOS反应相关基因的表达第66-67页
   ·结果与讨论第67-89页
     ·potD基因的PCR扩增及载体pET26b(+)-fpotD和pET26b(+)-ipotD的构建第67-69页
     ·载体pET26b(+)-fpotD和pET26b(+)-ipotD转化E coli DH5a和BL21(DE3)第69-70页
     ·PotD+的诱导表达和SDS-PAGE验证第70-71页
     ·PotD蛋白的纯化第71-72页
     ·游离态生长曲线的测定第72-74页
     ·PotDO生物膜的形成过程第74-78页
     ·PotD+生物膜形成状况第78-80页
     ·PotDi生物膜形成状况第80-82页
     ·SDS-PAGE和Western blotting检测生物膜中PotD的表达第82-83页
     ·生物膜形成过程中游离态的生长曲线第83-84页
     ·恒流器中PotD+,PotD0,PotDi的游离态和生物膜中SOS系统相关基因的相对表达第84-89页
   ·本章小结第89-91页
第四章 Escherichia coli中TldD蛋白的过量减量表达及其对生物膜形成的影响第91-121页
   ·材料与方法第93-102页
     ·材料第93-95页
       ·菌株质粒及遗传特性第93-94页
       ·主要试剂及培养基第94-95页
     ·实验方法第95-102页
       ·PCR扩增E. coli BL21(DE3)tldD基因第95-96页
       ·载体pET28a(+)-ftldD和pET28a(+)-itldD的构建第96-97页
       ·载体pET28a(+)-ftldD和pET28a(+)-itldD的转化及重组子的验证第97-98页
       ·TldD蛋白纯化及抗体制备第98页
       ·λ-RED同源重组技术敲除MD基因第98-101页
       ·PCR产物的转化和阳性克隆的筛选第101页
       ·卡那抗性的重组消除第101-102页
       ·游离态菌的生长曲线的测定第102页
   ·结果与讨论第102-119页
     ·tldD基因的PCR扩增及载体pET28a(+)-ftldD和pET28a(+)-itldD的构建第102-103页
     ·载体pET28a(+)-ftldD和pET28a(+)-itldD转化E.coli DH5α和BL21(DE3)第103-104页
     ·TldD+的诱导表达和SDS-PAGE验证第104-105页
     ·TldD蛋白的纯化第105-106页
     ·游离态生长曲线的检测第106-107页
     ·TldD0生物膜形成状况第107-109页
     ·TldD+生物膜形成状况第109-110页
     ·TldDi生物膜形成状况第110-112页
     ·SDS-PAGE和Western blotting检测生物膜中TldD蛋白的表达第112-113页
     ·生物膜形成过程中游离态的生长曲线第113-114页
     ·恒流器中TldD+,TldD0,TldDi的游离态和生物膜中SOS系统相关基因的相对表达第114-119页
   ·本章小结第119-121页
第五章 谷氨酰胺合成酶的过量表达对E.coli BL21(DE3)生物膜形成的影响第121-130页
   ·材料与方法第121-123页
     ·材料第121-122页
       ·菌株质粒及遗传特性第121-122页
       ·培养基及培养条件第122页
     ·方法第122-123页
   ·结果与讨论第123-129页
     ·谷氨酰胺合成酶基因的PCR扩增及载体pET28a(+)-fglnA的构建第123-124页
     ·载体pET28a(+)-fglnA在E.coli BL21(DE3)中的表达第124-126页
     ·谷氨酰胺合成酶在GSIO和GSI+生物膜中的表达第126页
     ·生物膜中谷氨酰胺合成酶过量常量表达时的酶活测定第126-127页
     ·GSIO和GSI+的生物膜形成状况第127-129页
   ·本章小结第129-130页
第六章 P.putida F1中tldD基因敲除所用同源片段的构建第130-138页
   ·材料与方法第132-136页
     ·材料第132页
       ·菌株质粒及遗传特性第132页
       ·主要试剂及培养基第132页
     ·方法第132-136页
       ·PCR扩增片段gskⅠ、gskⅡ、kan第132-134页
       ·融合PCR连接片段gskⅠ、gskⅡ、kan第134-136页
   ·结果与讨论第136-137页
     ·融合PCR构建tldD gene同源片段tldDkF第136页
     ·融合PCR的引物及反应设计第136-137页
   ·本章小结第137-138页
全文总结第138-140页
参考文献第140-156页
在读期间发表论文情况第156-157页
致谢第157-158页
外文论文第158-187页
学位论文评阅及答辩情况表第187页

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