| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 英文縮略表 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-22页 |
| ·试剂与材料 | 第16-17页 |
| ·主要试剂 | 第16页 |
| ·主要抗体 | 第16页 |
| ·主要仪器 | 第16-17页 |
| ·细胞培养和照射条件 | 第17页 |
| ·转化与质粒提取 | 第17-18页 |
| ·转化 | 第17页 |
| ·质粒提取 | 第17-18页 |
| ·细胞转染 | 第18页 |
| ·免疫荧光染色 | 第18-19页 |
| ·免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,co-IP) | 第19页 |
| ·细胞周期的同步化 | 第19-20页 |
| ·细胞周期测定 | 第20页 |
| ·细胞平板克隆形成实验 | 第20页 |
| ·生长曲线的测定 | 第20页 |
| ·蛋白定量 | 第20-21页 |
| ·标准曲线绘制 | 第20页 |
| ·待检测样本蛋白定量 | 第20-21页 |
| ·Western blot测定相关蛋白表达水平 | 第21页 |
| ·统计学分析 | 第21-22页 |
| 第三章 实验结果 | 第22-35页 |
| ·TAB182受电离辐射诱导表达 | 第22-25页 |
| ·TAB182/DNA-PKcs/TNKS的相互作用 | 第25页 |
| ·shRNA沉默TAB182表达导致HeLa细胞放射敏感性增加 | 第25-28页 |
| ·TAB182低表达细胞株的建立 | 第25-26页 |
| ·HeLa-NC与HeLa-shTAB182生长曲线的测定 | 第26页 |
| ·shRNA沉默TAB182表达导致HeLa细胞放射敏感性增加 | 第26-28页 |
| ·TAB182参与细胞周期进程的调节 | 第28-31页 |
| ·TAB182在HeLa细胞处在各细胞周期中的表达 | 第28-29页 |
| ·HeLa细胞TAB182低表达导致细胞周期S期进程的加快 | 第29-31页 |
| ·TAB182参与电离辐射诱导的细胞周期阻滞进程的调节 | 第31-33页 |
| ·TAB182对DNA损伤反应蛋白表达的调节 | 第33页 |
| ·TAB182对DNA-PKcs磷酸化的影响 | 第33-35页 |
| 第四章 讨论 | 第35-40页 |
| ·TAB182与DNA损伤修复 | 第35-37页 |
| ·TAB182与细胞周期 | 第37-38页 |
| ·TAB182与DNA-PKcs | 第38-40页 |
| 第五章 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 综述 | 第45-56页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 研究生期间的成绩 | 第57页 |
