| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 英文缩写及中英文对照表 | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第12-21页 |
| ·乙烯的生物合成 | 第12页 |
| ·乙烯信号转导的研究进展 | 第12-19页 |
| ·乙烯的感受 | 第13-16页 |
| ·乙烯的胞质内信号转导 | 第16-18页 |
| ·乙烯的核内信号传导 | 第18-19页 |
| ·研究目的与意义 | 第19-21页 |
| 2 实验材料与方法 | 第21-29页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·菌种质粒 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·培养基 | 第21-22页 |
| ·常用试剂配制 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-29页 |
| ·甜瓜果实总RNA提取 | 第23-24页 |
| ·引物设计与合成 | 第24-25页 |
| ·克隆引物的设计与合成 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR检测引物的设计与合成 | 第24-25页 |
| ·Cm-CTR1基因cDNA序列的克隆 | 第25-28页 |
| ·反转录反应 | 第25页 |
| ·Cm-CTR1基因cDNA序列的PCR扩增 | 第25页 |
| ·PCR产物纯化 | 第25-26页 |
| ·连接反应 | 第26页 |
| ·大肠杆菌JM109感受态细胞的制备 | 第26页 |
| ·重组质粒的转化 | 第26-27页 |
| ·重组质粒的鉴定 | 第27-28页 |
| ·序列的测定 | 第28页 |
| ·生物信息学分析 | 第28页 |
| ·甜瓜果实内源乙烯含量的测定 | 第28页 |
| ·甜瓜果实不同发育成熟阶段Cm-CTR1基因的表达特性分析 | 第28-29页 |
| 3 结果分析 | 第29-42页 |
| ·RNA的分析 | 第29页 |
| ·RT-RNA产物分析 | 第29-30页 |
| ·重组cDNA克隆的筛选鉴定 | 第30-38页 |
| ·重组质粒的快速提取法筛选 | 第30页 |
| ·重组质粒的菌体PCR检测 | 第30-31页 |
| ·重组质粒的酶切鉴定 | 第31-32页 |
| ·Cm-CTR1基因序列测序结果 | 第32-35页 |
| ·Cm-CTR1基因序列分析 | 第35-38页 |
| ·生物信息学分析 | 第38-40页 |
| ·进化树分析 | 第39页 |
| ·Cm-CTR1蛋白理化性质分析 | 第39页 |
| ·Cm-CTR1蛋白二级结构预测 | 第39-40页 |
| ·甜瓜果实内源乙烯含量的变化 | 第40-41页 |
| ·甜瓜Cm-CTR1基因的表达分析 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 附录 | 第44-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |