| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一章 低表达Caveolin-1的乳腺癌细胞系的筛选及培养 | 第15-20页 |
| 1 结果 | 第16-18页 |
| ·Caveolin-1在6种不同乳腺癌细胞系中的表达 | 第16-17页 |
| ·乳腺癌细胞系MCF-7的生长曲线 | 第17-18页 |
| 2 讨论 | 第18-20页 |
| 第二章 Caveolin-1基因在MCF-7细胞系中的转染及其效率的检测以及转染后细胞增殖速率的变化 | 第20-28页 |
| 1 实验结果 | 第21-26页 |
| ·Cav-1在MCF-7细胞系中的转染及其效率的检测 | 第21-22页 |
| ·Caveolin-1在转染后的MCF-7细胞中的表达情况 | 第22-24页 |
| ·转入的Caveolin-1的蛋白功能检测 | 第24-25页 |
| ·MTT检测转染Cav-1后细胞的增殖速率变化 | 第25-26页 |
| ·光镜检测转染Cav-1后细胞的增殖速率变化 | 第26页 |
| 2 讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 转染Caveolin-1后NGF信号通路蛋白表达及功能变化的检测 | 第28-37页 |
| 1 实验结果 | 第28-35页 |
| ·转染后24小时细胞形态的变化 | 第28-29页 |
| ·转染Cav-1后TrkA表达的变化 | 第29-31页 |
| ·转染Cav-1后Erk1/2磷酸化含量的变化 | 第31-32页 |
| ·转染Cav-1后RSK-2磷酸化含量的变化 | 第32-33页 |
| ·转染Cav-1后CREB磷酸化含量的变化 | 第33-35页 |
| 2 讨论 | 第35-37页 |
| 第四章 转染Caveolin-1对MCF-7细胞凋亡通路的影响 | 第37-42页 |
| 1 实验结果 | 第37-41页 |
| ·转染后24小时内细胞P38磷酸化含量的变化 | 第37-38页 |
| ·转染后Bax/Bcl-2表达的动力学曲线 | 第38-39页 |
| ·转染后24小时内细胞Bax/Bcl-2表达情况的免疫荧光检测 | 第39-41页 |
| 2 讨论 | 第41-42页 |
| 总结 | 第42-44页 |
| 材料与方法 | 第44-53页 |
| 1 基础试剂配方 | 第44-45页 |
| 2 主要抗体 | 第45-46页 |
| 3 主要仪器 | 第46页 |
| 4 实验材料 | 第46-47页 |
| 5 实验方法 | 第47-53页 |
| ·乳腺癌细胞系的培养 | 第47-48页 |
| ·Western Blotting蛋白检测 | 第48-50页 |
| ·MCF-7细胞的转染 | 第50-51页 |
| ·细胞增殖分析 | 第51-52页 |
| ·免疫荧光检测 | 第52页 |
| ·统计学处理 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 综述:细胞凋亡的信号转导通路研究进展 | 第61-69页 |
| 1、膜死亡信号通路 | 第61-63页 |
| 2、线粒体信号通路 | 第63-64页 |
| 3、内质网信号通路 | 第64-66页 |
| 4、结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
