| 前言 | 第1-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-37页 |
| 1． 银杏叶的应用 | 第9-13页 |
| 1．1 医药 | 第9-11页 |
| 1．2 食品 | 第11-12页 |
| 1．3 化妆品 | 第12页 |
| 1．4 生物农药 | 第12-13页 |
| 2． 银杏叶的主要化学成分 | 第13-21页 |
| 2．1 银杏叶中黄酮类化合物和银杏内酯 | 第14-16页 |
| 2．1．1 黄酮及其苷类化合物 | 第14页 |
| 2．1．2 双黄酮类化合物 | 第14-16页 |
| 2．1．3 儿茶素类化合物 | 第16-17页 |
| 2．1．4 银杏内酯类化合物 | 第17页 |
| 2．2 银杏中微量元素分析 | 第17-18页 |
| 2．3 银杏叶挥发油化学成分 | 第18-19页 |
| 2．4 银杏中氨基酸分析 | 第19-20页 |
| 2．5 银杏叶水份分析 | 第20-21页 |
| 3． 黄酮类化合物的性质 | 第21-22页 |
| 4． 黄酮类化合物的提取分离 | 第22-27页 |
| 4．1 有机溶剂提取法 | 第22-23页 |
| 4．2 超临界流体提取法 | 第23-24页 |
| 4．3 高效液相色谱（HPLC）分离法 | 第24-25页 |
| 4．4 生物提取法 | 第25-26页 |
| 4．5 水蒸汽蒸馏法 | 第26-27页 |
| 5． 黄酮类化合物的分析方法 | 第27-32页 |
| 5．1 分光光度法 | 第27页 |
| 5．2 衍生化-气相色谱法 | 第27页 |
| 5．3 高效液相色谱（HPLC）法 | 第27-31页 |
| 5．3．1 黄酮苷的高效液相色谱（HPLC）法 | 第29页 |
| 5．3．2 黄酮苷元的高效液相色谱（HPLC）法 | 第29-30页 |
| 5．3．3 高效液相色谱（HPLC）指纹分析 | 第30页 |
| 5．3．4 双黄酮的高效液相色谱（HPLC）分析 | 第30-31页 |
| 5．4 薄层色谱扫描法 | 第31页 |
| 5．5 超临界流体色谱法（SFC） | 第31-32页 |
| 6． 萜类内酯的分析方法 | 第32页 |
| 7． 目前黄酮类化合物提取技术研究进展 | 第32-37页 |
| 7．1 常用的提取方法及水平 | 第33-35页 |
| 7．1．1 乙醇提取工艺 | 第33-34页 |
| 7．1．2 水提-树脂法 | 第34-35页 |
| 7．1．3 醇提-树脂法 | 第35页 |
| 7．2 主要存在的问题 | 第35-36页 |
| 7．3 本研究的目的 | 第36-37页 |
| 第二章 试验内容 | 第37-42页 |
| 1． 试验所用的化学药品和仪器 | 第37-38页 |
| 1．1 试验所用的化学药品 | 第37页 |
| 1．2 试验所用的仪器 | 第37-38页 |
| 2． 银杏叶黄酮类化合物的分析方法 | 第38-39页 |
| 2．1 标准曲线的建立方法 | 第38页 |
| 2．2 银杏叶中总黄酮含量的测定方法 | 第38-39页 |
| 3． 银杏叶中黄酮类化合物的提取分离和富集 | 第39-42页 |
| 3．1 银杏叶中黄酮类化合物的提取分离 | 第39-40页 |
| 3．1．1 大孔吸附树脂的预处理 | 第39页 |
| 3．1．2 吸附树脂装柱步骤 | 第39-40页 |
| 3．1．3 吸附树脂的使用 | 第40页 |
| 3．1．4 黄酮类化合物的富集分离 | 第40页 |
| 3．2 银杏叶提取物（GBE）中总黄酮的含量测定 | 第40-42页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第42-68页 |
| 1． 银杏叶分析方法的建立 | 第42-48页 |
| 1．1 测量依据 | 第42-43页 |
| 1．2 最佳比色条件的建立 | 第43-47页 |
| 1．2．1 测定波长的选择 | 第43-44页 |
| 1．2．2 最佳分析条件的选择 | 第44-47页 |
| 1．2．3 标准曲线的建立 | 第47页 |
| 1．3 银杏叶中总黄酮含量的测定 | 第47-48页 |
| 2． 银杏叶中黄酮类化合物的浸取 | 第48-53页 |
| 2．1 浸取溶剂的选择 | 第48-49页 |
| 2．2 最佳浸取条件的选择 | 第49-50页 |
| 2．3 浸取温度的确定 | 第50-51页 |
| 2．4 浸取溶剂pH值的确定 | 第51页 |
| 2．5 银杏叶粉碎程度对浸取的影响 | 第51-52页 |
| 2．6 交替浸取工艺的选择 | 第52-53页 |
| 3． 浸取液中黄酮类化合物的富集分离 | 第53-66页 |
| 3．1 吸附原理 | 第54页 |
| 3．2 大孔吸附树脂的筛选 | 第54-55页 |
| 3．3 静态吸附试验 | 第55-60页 |
| 3．3．1 静态吸附最佳吸附条件的确立 | 第56页 |
| 3．3．2 吸附时间的确定 | 第56-57页 |
| 3．3．3 上柱液pH值对吸附效果的影响 | 第57-58页 |
| 3．3．4 吸附温度对吸附效果的影响 | 第58页 |
| 3．3．5 树脂用量对吸附效果的影响 | 第58-59页 |
| 3．3．6 吸附液浓度对吸附效果的影响 | 第59-60页 |
| 3．4 静态吸附最佳解吸条件的确立 | 第60-62页 |
| 3．4．1 洗脱剂的选择 | 第60页 |
| 3．4．2 洗脱剂浓度对解吸率的影响 | 第60-61页 |
| 3．4．3 洗脱温度的确立 | 第61页 |
| 3．4．4 洗脱时间的确立 | 第61-62页 |
| 3．5 动态吸附最佳吸附条件的确立 | 第62-66页 |
| 3．5．1 最佳吸附时溶液流速的确立 | 第62-63页 |
| 3．5．2 吸附液量与吸附树脂量的关系 | 第63-64页 |
| 3．5．3 洗脱剂用量的确定 | 第64页 |
| 3．5．4 水洗剂对GBE中黄酮含量的影响 | 第64-65页 |
| 3．5．5 低度醇洗液浓度、用量对GBE中黄酮含量的影响 | 第65页 |
| 3．5．6 树脂使用次数对吸附的影响 | 第65-66页 |
| 4． 干燥方法对产品质量的影响 | 第66-68页 |
| 第四章 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 致谢 | 第73页 |