地锦(Parthenocissus tricuspidata)的遗传转化及抑菌活性研究
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
目录 | 第7-12页 |
第一章 | 第12-46页 |
摘要 | 第13-14页 |
1.引言 | 第14-15页 |
2 材料和方法 | 第15-25页 |
·试剂和仪器 | 第15页 |
·植物基本培养基及细菌常规培养基 | 第15页 |
·菌株和载体 | 第15页 |
·植物材料 | 第15-16页 |
·方法 | 第16-25页 |
·技术路线 | 第16-17页 |
·构建重组基因植物表达载体 | 第17-19页 |
·地锦愈伤组织诱导、继代和分化培养 | 第19-21页 |
·遗传转化 | 第21-22页 |
·转基因愈伤组织鉴定 | 第22-24页 |
·转基因愈伤组织的耐盐、抗旱能力鉴定 | 第24-25页 |
3. 结果 | 第25-34页 |
·重组质粒p2326的构建 | 第25-26页 |
·愈伤组织的诱导及继代培养 | 第26页 |
·卡那霉素选择压的确定 | 第26-27页 |
·农杆菌介导转化地锦外植体 | 第27页 |
·转化子的筛选 | 第27-28页 |
·转化子鉴定 | 第28-30页 |
·GUS组织染色 | 第28-29页 |
·转基因愈伤组织PCR检测 | 第29-30页 |
·转基因愈伤组织耐盐、抗旱能力鉴定 | 第30-34页 |
·盐胁迫实验 | 第30-31页 |
·游离脯氨酸含量的测定 | 第31-34页 |
4. 讨论 | 第34-40页 |
·愈伤组织的诱导和植株再生 | 第34-35页 |
·愈伤组织的诱导 | 第34页 |
·外植体的褐变问题 | 第34-35页 |
·地锦愈伤组织的分化 | 第35页 |
·影响农杆菌介导的遗传转化因素 | 第35-36页 |
·选择剂、选择压的选择 | 第35-36页 |
·除菌选择培养 | 第36页 |
·启动子对转化效率的影响 | 第36页 |
·转基因地锦愈伤组织的组织化学及分子鉴定 | 第36-37页 |
·脱水应答元件结合蛋白DREB | 第37-38页 |
·高盐胁迫下的脯氨酸含量变化 | 第38-39页 |
·地锦的抑菌作用 | 第39-40页 |
小结 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-46页 |
第二章 | 第46-65页 |
摘要 | 第47-48页 |
1. 引言 | 第48-50页 |
2. 材料和方法 | 第50-54页 |
·材料 | 第50页 |
·地锦 | 第50页 |
·供试菌 | 第50页 |
·培养基 | 第50页 |
·试剂 | 第50页 |
·方法 | 第50-54页 |
·不同时期地锦茎、叶的抑菌作用初步检测 | 第50-52页 |
·地锦叶片的抑菌作用检测 | 第52-54页 |
3 结果与分析 | 第54-58页 |
·不同时期地锦提取物的抑菌活性 | 第54页 |
·各组分的抑菌活性检测 | 第54-55页 |
·叶片正丁醇提取物的最小抑菌浓度(MIC)测定 | 第55-56页 |
·叶片正丁醇提取物的稳定性 | 第56-57页 |
·提取物对抗性菌的抑制作用 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-61页 |
·不同时期地锦茎、叶的抑菌活性 | 第58页 |
·中药材化学成分的提取 | 第58-59页 |
·地锦正丁醇提取物的热稳定性 | 第59页 |
·微生物的耐药性问题 | 第59-60页 |
·抑菌成分的纯化分析 | 第60-61页 |
小结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-65页 |
文献综述 | 第65-81页 |
地锦属植物研究概况 | 第65-76页 |
1 生物学特性 | 第66-68页 |
·植物形态 | 第66页 |
·分布 | 第66-67页 |
·生长习性 | 第67-68页 |
·吸盘附着机制 | 第68页 |
2 地锦的药用价值 | 第68-69页 |
3 地锦的主要化学成分及提取分离 | 第69-70页 |
4 地锦在生态上的应用 | 第70-73页 |
·绿化价值 | 第70-71页 |
·调节和改善小气候 | 第71-72页 |
·水土保持和荒漠化治理 | 第72-73页 |
5 繁殖技术 | 第73-74页 |
6 地锦育种研究 | 第74页 |
7 综合开发利用前景 | 第74-76页 |
参考文献 | 第76-81页 |
附录1 主要实验试剂 | 第81-84页 |
附录2 主要实验仪器 | 第84-85页 |
附录3 培养基 | 第85-88页 |
在读期间发表论文及专利申请情况 | 第88-89页 |
致谢 | 第89页 |