独创性声明 | 第1页 |
学位论文使用授权书 | 第3-4页 |
摘 要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-22页 |
0 前言 | 第22-70页 |
1 DNA 电化学生物传感器 | 第22-52页 |
·DNA 的结构 | 第22-23页 |
·DNA 的分子导电性 | 第23-24页 |
·DNA 分子中电荷传递的研究方法 | 第23页 |
·影响 DNA 分子内电子转移的因素 | 第23-24页 |
·碱基错配 | 第24页 |
·DNA 修饰膜的螺旋链的排列 | 第24页 |
·电化学 DNA 传感器 | 第24-52页 |
·电化学 DNA 传感器的研究现状 | 第24-25页 |
·电化学基因识别型传感器 | 第25-51页 |
·电化学基因识别型传感器的原理 | 第25-26页 |
·DNA 在基底材料上的固定方法 | 第26-40页 |
·直接吸附法 | 第26页 |
·直接共价键合法 | 第26-27页 |
·蛋白质结合法 | 第27页 |
·聚合物膜法 | 第27-35页 |
·自组装膜法 | 第35-40页 |
·DNA 分子杂交技术 | 第40-41页 |
·影响杂交的一些因素 | 第40-41页 |
·杂交速率 | 第41页 |
·电化学基因识别传感器的杂交信息表达 | 第41-50页 |
·指示剂型 | 第41-46页 |
·无指示剂或标记型(Indicator Free & Label Free·) | 第46-50页 |
·关于基因识别型DNA 电化学传感器的展望 | 第50-51页 |
·非基因识别型 DNA 电化学传感器 | 第51-52页 |
2 存在的问题、建议 | 第52-54页 |
3 课题的提出及研究内容 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-70页 |
第一部分 三种聚合物膜制备DNA 电化学传感器的研究 | 第70-144页 |
第一章 基于聚2,6-吡啶二甲酸/Mg~(2+)膜制备 DNA 杂交型电化学传感器的研究 | 第70-95页 |
1 实验部分 | 第71-74页 |
·仪器与试剂 | 第71页 |
·实验方法 | 第71-74页 |
·电极处理 | 第71-72页 |
·Mg/PDC/GC 电极的制备 | 第72页 |
·单链DNA 的固定与杂交 | 第72-73页 |
·以MB为杂交指示剂对DNA固定和杂交的电化学表征 | 第73页 |
·采用K_3Fe(CN)_6/K_4Fe(CN)_6混合体系的交流阻抗技术表征 | 第73-74页 |
·Co(phen)_2~(2+)与DNA的相互作用的电化学研究 | 第74页 |
2 结果与讨论 | 第74-91页 |
·Mg/PDC/GC 电极的制备与表征 | 第74-77页 |
·ssDNA 在Mg/PDC/GC 电极上固定的表征及最佳条件选择 | 第77-81页 |
·ssDNA 在Mg/PDC/GC 电极上固定的表征 | 第77-80页 |
·K_3Fe(CN)_6对ssDNA在Mg/PDC/GC电极上固定的表征 | 第77-78页 |
·亚甲基兰对ssDNA 在Mg/PDC/GC 电极上固定的表征 | 第78-80页 |
·ssDNA 在Mg/PDC/GC 电极上的固定最佳条件选择 | 第80-81页 |
·以K_3Fe(CN)_6为指示剂 | 第80-81页 |
·以亚甲基兰为指示剂 | 第81页 |
·ssDNA/Mg/PDC/GC 电极的杂交的表征及最佳条件选择 | 第81-88页 |
·以亚甲基兰为杂交指示剂 | 第82-85页 |
·亚甲基兰在ssDNA(dsDNA)/Mg/PDC/GC 电极上的伏安行为 | 第82-83页 |
·DNA 杂交条件的选择 | 第83-85页 |
·基于Fe(CN)_6~(3-)/Fe(CN)_6~(4-)的电化学交流阻抗表征 | 第85-88页 |
·Co(phen)_2~(2+)作为杂交指示剂的初步探讨 | 第88-91页 |
参考文献 | 第91-95页 |
第二章 DNA在聚L-谷氨酸膜上固定和杂交的伏安法研究 | 第95-122页 |
第一节 基于聚L-谷氨酸/Al~(3+)膜的DNA电化学传感器的制备 | 第95-115页 |
1 实验部分 | 第95-98页 |
·仪器与试剂 | 第95-96页 |
·实验方法 | 第96-98页 |
·CPE 的制备 | 第96页 |
·Al/PLGA/CPE 电极的制备 | 第96页 |
·ssDNA 在Al/PLGA/CPE 电极的固定 | 第96页 |
·ssDNA 的杂交 | 第96-97页 |
·ssDNA 在电极上进行固定和杂交的电化学表征 | 第97-98页 |
·以MB 为杂交指示剂对DNA 固定和杂交的电化学表征 | 第97-98页 |
·以Co(phen)22+为杂交指示剂对DNA 固定和杂交的电化学表征 | 第98页 |
2 结果与讨论 | 第98-115页 |
·PLGA/CPE 电极的制备 | 第98-99页 |
·以MB 作为指示剂对ssDNA 在Al/PLGA/CPE 电极上的固定和杂交的表征 | 第99-108页 |
·MB 在DNA/Al/PLGA/CPE 上的微分脉冲伏安行为 | 第99-103页 |
·ssDNA 固定和杂交条件的优化 | 第103-108页 |
·Al/PLGA /CPE 电极制备条件的选择 | 第103-104页 |
·ssDNA 在Al/PLGA/CPE 电极上固定化条件的选择 | 第104-107页 |
·ssDNA 杂交条件的选择 | 第107-108页 |
·以Co(phen)_2~(2+)为指示剂对固定和杂交的研究 | 第108-115页 |
·Co(phen)_2~(2+)在ssDNA/Al/PLGA/CPE 上的循环伏安行为 | 第108-110页 |
·Co(phen)_2~(2+)在DNA/Al/PLGA/CPE上的微分脉冲伏安行为 | 第110-111页 |
·ssDNA固定和杂交条件的优化 | 第111-115页 |
·ssDNA 在Al/PLGA/CPE 电极上固定化条件的选择 | 第111-112页 |
·ssDNA 杂交条件的选择 | 第112-115页 |
·浸泡吸附法固定ssDNA 杂交条件的选择 | 第112-113页 |
·恒电位吸附法固定ssDNA 杂交条件的选择 | 第113-115页 |
第二节 基于聚L-谷氨酸膜共价键合法制备DNA电化学传感器 | 第115-120页 |
1 实验部分 | 第115-116页 |
·仪器与试剂 | 第115页 |
·实验方法 | 第115-116页 |
·CPE 的制备 | 第115页 |
·PLGA/CPE 电极的制备 | 第115页 |
·ssDNA 在PLGA/CPE 电极的固定及杂交 | 第115-116页 |
2 结果与讨论 | 第116-120页 |
·Co(phen)_2~(2+)在DNA/PLGA/CPE 上的循环伏安行为 | 第116-118页 |
·ssDNA 固定和杂交条件的优化 | 第118-120页 |
·PLGA/CPE 电极上共价键合固定ssDNA 条件的选择 | 第118页 |
·杂交条件的选择 | 第118-120页 |
参考文献 | 第120-122页 |
第三章 聚邻氨基酚/Ni~(2+)及聚邻氨基酚/Ni~(2+)-DNA 修饰碳糊电极的制备及其对多巴胺的电化学检测 | 第122-144页 |
第一节 聚邻氨基酚/Ni~(2+)修饰碳糊电极的制备及其对多巴胺的选择性检测 | 第123-131页 |
1 实验部分 | 第123-125页 |
·仪器与试剂 | 第123-124页 |
·实验方法 | 第124-125页 |
·CPE 的制备 | 第124页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 修饰电极的制备 | 第124页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极的伏安特性研究 | 第124页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 修饰电极电催化氧化多巴胺 | 第124-125页 |
2 结果与讨论 | 第125-131页 |
·P-OAP膜的制备 | 第125-126页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极的伏安特性 | 第126-127页 |
·多巴胺在Ni~(2+)/P-OAP/CPE电极上的电化学行为 | 第127-129页 |
·最佳催化条件选择 | 第129页 |
·聚合圈数的选择 | 第129页 |
·最佳泡Ni~(2+)时间的选择 | 第129页 |
·电极的活化时间 | 第129页 |
·缓冲溶液 pH 值的影响 | 第129页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极对DA 的电催化测定 | 第129页 |
·抗坏血酸存在时对多巴胺的选择性检测 | 第129-131页 |
第二节 多巴胺在dsDNA/Ni~(2+)/聚邻氨基酚修饰碳糊电极的伏安行为 | 第131-141页 |
1 实验部分 | 第131-133页 |
·仪器与试剂 | 第132页 |
·实验方法 | 第132-133页 |
·CPE 的制备 | 第132页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 修饰电极的制备 | 第132页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极的伏安特性研究 | 第132页 |
·dsDNA 在Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极的固定 | 第132-133页 |
·dsDNA/Ni~(2+)/P-OAP/CPE 修饰电极电催化氧化多巴胺 | 第133页 |
2 结果与讨论 | 第133-141页 |
·Ni~(2+)/P-OAP 膜的制备 | 第133-134页 |
·Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极的伏安特性 | 第134-135页 |
·dsDNA 在Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极上的固定及其表征 | 第135-136页 |
·dsDNA 在Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极上固定化条件选择 | 第136-137页 |
·dsDNA/Ni~(2+)/P-OAP/CPE 电极电催化多巴胺的研究 | 第137-138页 |
·dsDNA/Ni~(2+)/P-OAP/CPE 修饰电极对多巴胺选择性检测 | 第138-141页 |
参考文献 | 第141-144页 |
第二部分 基于对-巯基苯胺自组装膜的 DNA 电化学传感器的构建及其应用 | 第144-170页 |
第一章 对-巯基苯胺自组装膜修饰电极的制备 | 第145-149页 |
1 实验部分 | 第145页 |
·仪器与试剂 | 第145页 |
·PATP/Au 自组装膜的制备 | 第145页 |
2 结果与讨论 | 第145-149页 |
·PATP/Au 自组装膜制备原理 | 第145-146页 |
·PATP/Au 自组装膜伏安法表征 | 第146-147页 |
·PATP/Au 自组装膜电化学交流阻抗法表征 | 第147-148页 |
·自组装时间的选择 | 第148-149页 |
第二章 ssDNA在PATP自组装膜上的固定与杂交 | 第149-170页 |
第一节恒电位吸附法固定ssDNA | 第149-153页 |
1 实验部分 | 第149页 |
·仪器与试剂 | 第149页 |
·实验方法 | 第149页 |
2 结果与讨论 | 第149-153页 |
·Co(phen)_2Cl_2在DNA/PATP/Au 上的微分脉冲伏安行为 | 第149-150页 |
·ssDNA 固定和杂交的最佳条件的选择 | 第150-153页 |
·固定ssDNA 条件的选择 | 第150-151页 |
·杂交条件的选择 | 第151-153页 |
第二节共价键合法固定ssDNA | 第153-158页 |
1 实验部分 | 第153-154页 |
·仪器与试剂 | 第153页 |
·实验方法 | 第153-154页 |
2 结果与讨论 | 第154-158页 |
·Co(phen)_2Cl_2在DNA/PATP/Au 上的电化学行为 | 第154-155页 |
·铁氰化钾在DNA/PATP/Au 上的电化学行为 | 第155-156页 |
·ssDNA固定和杂交条件的选择 | 第156-158页 |
·EDC 的活化作用 | 第156-157页 |
·活化固定时间的选择 | 第157-158页 |
·杂交条件的选择 | 第158页 |
第三节 电位控制-共价键合法固定DNA | 第158-167页 |
1 实验部分 | 第158页 |
·仪器与试剂 | 第158页 |
·实验方法 | 第158页 |
2 结果与讨论 | 第158-167页 |
·Co(phen)_2Cl_2在DNA/PATP/Au 上的电化学行为 | 第158-159页 |
·铁氰化钾在DNA/PATP/Au 上的电化学行为 | 第159-163页 |
·铁氰化钾在DNA/PATP/Au 上的循环伏安行为 | 第159-162页 |
·铁氰化钾在DNA/PATP/Au 上的交流阻抗行为 | 第162-163页 |
·ssDNA固定和杂交条件的选择 | 第163-164页 |
·ssDNA 固定条件的选择 | 第163-164页 |
·最佳固定电位的选择 | 第163-164页 |
·DNA 固定时间的选择 | 第164页 |
·杂交条件的选择 | 第164页 |
·DNA 电化学传感器的应用 | 第164-167页 |
·碱基序列的测定 | 第164-166页 |
·孔雀石绿作为电化学标记物的研究 | 第166-167页 |
参考文献 | 第167-170页 |
结论 | 第170-172页 |
附录:攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第172-174页 |
致谢 | 第174页 |