| 中英文缩略词表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 引言 | 第16-19页 |
| 第一部分 δ-阿片受体对PC12细胞OGD/R的保护作用 | 第19-47页 |
| 前言 | 第19页 |
| 1 实验材料 | 第19-25页 |
| 1.1 细胞株 | 第19页 |
| 1.2 主要试剂 | 第19-22页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 1.4 主要耗材 | 第23-24页 |
| 1.5 实验中主要溶液配制 | 第24-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-35页 |
| 2.1 细胞复苏 | 第25页 |
| 2.2 细胞培养和传代 | 第25-26页 |
| 2.3 细胞冻存 | 第26页 |
| 2.4 细胞计数 | 第26页 |
| 2.5 OGD/R损伤模型的建立 | 第26页 |
| 2.6 分组及给药 | 第26-27页 |
| 2.7 CCK-8 检测DOR对 OGD/R诱导的PC12 细胞损伤保护作用 | 第27页 |
| 2.8 光镜观察细胞形态学变化 | 第27-28页 |
| 2.9 LDH漏出率的检测 | 第28-29页 |
| 2.10 TUNEL染色 | 第29页 |
| 2.11 Western blot检测方法 | 第29-31页 |
| 2.12 qRT-PCR检测方法 | 第31-34页 |
| 2.13 ELISA检测方法 | 第34页 |
| 2.14 统计学处理分析 | 第34-35页 |
| 3 实验结果 | 第35-44页 |
| 3.1 确定PC12 细胞OGD/R时间 | 第35-36页 |
| 3.2 DOR对 PC12 细胞OGD/R损伤形态学影响 | 第36-37页 |
| 3.3 CCK-8 检测DOR对 PC12 细胞OGD/R损伤后的细胞存活情况 | 第37-38页 |
| 3.4 LDH的变化 | 第38-39页 |
| 3.5 TUNEL染色结果 | 第39-40页 |
| 3.6 Western Blot检测结果 | 第40-41页 |
| 3.7 ELISA检测结果 | 第41-42页 |
| 3.8 q RT-PCR检测DOR、Trk B的 m RNA水平结果 | 第42-43页 |
| 3.9 q RT-PCR检测结果IL-6、IL-1β、IL-4、IL-10的m RNA水平 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 5 小结 | 第46-47页 |
| 第二部分 δ-阿片受体在电针“人中”、“内关”穴对大鼠脑缺血/再灌注损伤中的研究 | 第47-65页 |
| 前言 | 第47-48页 |
| 1 实验材料 | 第48-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 实验试剂 | 第48-50页 |
| 1.3 主要设备 | 第50页 |
| 1.4 实验主要耗材 | 第50-51页 |
| 1.5 实验中主要溶液配制 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-57页 |
| 2.1 实验动物分组及给药 | 第52-53页 |
| 2.2 大鼠大脑中动脉缺血再灌注模型(MCAO)的制作 | 第53页 |
| 2.3 侧脑室给药方法 | 第53-54页 |
| 2.4 EA治疗方法 | 第54-55页 |
| 2.5 术后神经功能的评分及体重的改变 | 第55页 |
| 2.6 尼氏染色(焦油紫法)检测大鼠脑梗死体积 | 第55-56页 |
| 2.7 免疫组织荧光染色鉴定脑组织中IL-1β、IL-10的表达 | 第56页 |
| 2.8 统计学处理分析 | 第56-57页 |
| 3 实验结果 | 第57-62页 |
| 3.1 实验各组体重变化结果 | 第57页 |
| 3.2 实验各组神经功能评分 | 第57-58页 |
| 3.3 大鼠脑缺血侧体积CV染色结果 | 第58-59页 |
| 3.4 IL-1β免疫荧光结果 | 第59-60页 |
| 3.5 IL-10免疫荧光结果 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-64页 |
| 5 小结 | 第64-65页 |
| 第三部分 DOR-siRNA转染PC12 细胞对DOR抗脑I/R作用的研究 | 第65-72页 |
| 前言 | 第65页 |
| 1 实验材料 | 第65-67页 |
| 1.1 细胞株 | 第65-66页 |
| 1.2 实验试剂 | 第66页 |
| 1.3 主要设备 | 第66页 |
| 1.4 实验主要耗材 | 第66-67页 |
| 2 实验方法 | 第67-69页 |
| 2.1 细胞培养 | 第67页 |
| 2.2 细胞转染效率的评价 | 第67页 |
| 2.3 siRNA片段的设计与合成 | 第67页 |
| 2.4 细胞转染实验 | 第67-68页 |
| 2.5 Realtime PCR检测 | 第68页 |
| 2.6 Western blot检测 | 第68-69页 |
| 3 实验结果 | 第69-70页 |
| 3.1 oligo效率评价 | 第69页 |
| 3.2 RT-PCR检测结果 | 第69-70页 |
| 3.3 Western blot检测结果 | 第70页 |
| 4 讨论 | 第70-71页 |
| 5 小结 | 第71-72页 |
| 总结 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-82页 |
| 附录 | 第82-93页 |
| 附录Ⅰ 文献综述 脑 I/R 损伤状态下小胶质细胞的极化现象与影响因素 | 第82-93页 |
| 参考文献 | 第89-93页 |
| 附录Ⅱ 在读期间已发表及待发表论文 | 第93页 |
