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旋转振荡培养CHO DG44细胞及瞬时表达重组sPDGFRα-Fc融合蛋白

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-9页
第一章 前言第9-19页
 1 Cho表达系统的研究进展第9-13页
 2 一次性生物反应器的应用第13-14页
 3 血小板衍生生长因子(PDGF)受体药物的研究进展第14-15页
 4 多聚阳离子PEI转染动物细胞机制的研究进展第15-17页
 5 本研究的意义和目的第17页
 6 本研究的创新点和特色第17-18页
 7 技术路线第18-19页
第二章 实验材料与设备第19-25页
 1 主要仪器设备第19-20页
 2 常用试剂第20页
 3 DNA及蛋白酶第20-21页
 4 菌株、细胞株第21页
 5 培养基和抗生素第21-22页
 6 实验试剂第22-24页
   ·工具酶第22页
   ·分子量参照物第22页
   ·转染试剂第22页
   ·试剂配制第22-24页
 7 其它试剂及材料第24-25页
第三章 实验方法与步骤第25-38页
 1 表达质粒的构建及测序分析第25-31页
   ·sPDGFRa-Fc的片段的准备第25-26页
     ·引物设计第25页
     ·sPDGFRa-Fc片段PCR第25-26页
   ·表达载体的抽提第26-27页
   ·sPDGFRa-Fc片段和表达载体的双酶切第27-28页
   ·酶切产物的回收第28页
   ·连接反应第28页
   ·感受态大肠杆菌DH5a的制备第28-29页
   ·连接产物的转化第29页
   ·重组子的鉴定第29-30页
     ·PCR鉴定第29-30页
     ·重组子的序列分析第30页
   ·中抽表达质粒第30-31页
 2 转染DG44细胞第31-33页
   ·DG44细胞的培养与冻存第31页
   ·细胞活力的测定第31页
   ·转染条件的摸索第31-32页
   ·流式细胞仪测定转染效率第32页
   ·表达质粒的转染第32-33页
 3 sPDGFRa-Fc的表达及鉴定第33-36页
   ·ELISA检测目的蛋白的浓度第33页
   ·Western blot鉴定[54]第33-36页
     ·细胞蛋白提取第33页
     ·样品准备第33-34页
     ·抽提蛋白定量(Bradford法)第34页
     ·SDS-PAGE胶配制第34-35页
     ·上样电泳第35页
     ·转膜第35页
     ·抗体和目的蛋白的结合第35-36页
 4 马尔文粒径分析仪分析DNA-PEI复合物第36-37页
   ·不同盐浓度对DNA-PEI复合物粒径大小的影响第36页
   ·不同DNA-PEI质量比对复合物粒径大小的影响第36页
   ·DNA-PEI复合物粒径大小与时间的关系第36页
   ·经典的转染方法下,DNA-PEI复合物的粒径在基础培养基中的变化趋势第36-37页
 5 原子力显微镜观测DNA-PEI复合物微粒胞吞DG44细胞第37-38页
第四章 结果第38-51页
 1 表达载体的构建第38-41页
 2 转染DG44细胞第41-46页
   ·悬浮振荡培养与静置培养DG细胞的比较第41-42页
   ·转染试剂的筛选第42-43页
   ·pEGFP转染DG44细胞DNA:PEI最佳比例的摸索第43-45页
   ·合适载体的筛选第45-46页
 3 目的蛋白的检测第46-47页
 4 马尔文粒径分析仪测定DNA-PEI复合物的粒径变化第47-50页
   ·不同盐离子浓度对DNA-PEI复合物粒径的影响第47-48页
   ·不同DNA-PEI比例对DNA-PEI复合物粒径大小第48-49页
   ·DNA-PEI复合物的粒径在150mMOLNaCl随着时间的变化第49页
   ·经典转染法DNA-PEI复合物在培养基中的变化趋势第49-50页
 5 原子力显微镜检测转染后细胞膜变化第50-51页
第五章 讨论第51-55页
 1 瞬时转染方法第51页
 2. 50 mL一次性tubespin(?)细胞培养管培养CHO DG44细胞技术体系的建立第51-52页
 3 CHO表达系统表达糖基化蛋白第52页
 4 FC融合蛋白的优点第52-53页
 5 抗阻遏子的作用第53-54页
 6 影响转染效率因素的初步研究第54-55页
结论与展望第55-56页
 1 、结论第55页
 2 、展望第55-56页
参考文献第56-62页
附录第62-69页
 附录1 在校期间发表文章第62-68页
 附录2 英文缩略词表第68-69页
在学期间发表文章第69-70页
经费资助第70-71页
致谢第71页

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