| 中文摘要 | 第7-11页 |
| 英文摘要 | 第11-15页 |
| 第一章 基于质谱技术的脂质组学研究现状和发展趋势 | 第16-54页 |
| 1 脂质组学样品前处理 | 第16-21页 |
| 1.1 通用脂质提取方法 | 第16-18页 |
| 1.2 新型脂质提取方法 | 第18-19页 |
| 1.3 脂质化合物的衍生化 | 第19-21页 |
| 2 基于质谱技术的脂质组学分析方法和策略 | 第21-25页 |
| 2.1 鸟枪法 | 第21-22页 |
| 2.2 色谱质谱联用法 | 第22-25页 |
| 2.3 质谱成像法 | 第25页 |
| 3 脂质分子中C=C双键位置的确定技术 | 第25-31页 |
| 3.1 在线质谱技术 | 第26-27页 |
| 3.2 臭氧化反应技术 | 第27-28页 |
| 3.3 离线化学衍生化法 | 第28-31页 |
| 4 基于质谱技术的脂质组学研究发展新趋势 | 第31-38页 |
| 4.1 单细胞脂质组学研究 | 第31-33页 |
| 4.2 基于稳定同位素标记化合物的脂质代谢流研究 | 第33-34页 |
| 4.3 脂质组学与其他组学技术的联合应用 | 第34-38页 |
| 5 总结 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-54页 |
| 第二章 基于新型高效衍生化策略的脂肪酸相对定量分析的HPLC-MS/MS法 | 第54-75页 |
| 1 仪器设备与实验材料 | 第55页 |
| 1.1 仪器设备 | 第55页 |
| 1.2 实验材料 | 第55页 |
| 2 实验方法 | 第55-58页 |
| 2.1 动物实验 | 第55-56页 |
| 2.2 生物样品的前处理 | 第56页 |
| 2.3 脂肪酸的衍生化 | 第56-57页 |
| 2.4 标准溶液和线性考察标准工作溶液的制备 | 第57页 |
| 2.5 质谱条件优化样品的制备 | 第57页 |
| 2.6 仪器分析条件 | 第57-58页 |
| 2.7 数据处理和统计分析 | 第58页 |
| 3 实验结果和讨论 | 第58-72页 |
| 3.1 脂肪酸衍生化条件的优化 | 第58-60页 |
| 3.2 衍生化脂肪酸的色谱行为 | 第60-61页 |
| 3.3 衍生化脂肪酸的检测灵敏度 | 第61页 |
| 3.4 生物样品中脂肪酸的全面表征 | 第61-68页 |
| 3.5 大鼠血浆中脂肪酸分析 | 第68-71页 |
| 3.6 大鼠衰老进程中脂肪酸轮廓的研究 | 第71-72页 |
| 4 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-75页 |
| 第三章 基于高灵敏度和特异性衍生化策略的类二十烷酸定量分析方法 | 第75-107页 |
| 1 仪器设备与实验材料 | 第76-77页 |
| 1.1 仪器设备 | 第76-77页 |
| 1.2 实验材料 | 第77页 |
| 2 实验方法 | 第77-84页 |
| 2.1 标准溶液和方法验证样品的制备 | 第77-78页 |
| 2.2 大鼠心肌缺血损伤模型的建立 | 第78页 |
| 2.3 生物样品的前处理 | 第78-79页 |
| 2.4 类二十烷酸的衍生化反应缩合剂的优化 | 第79-80页 |
| 2.5 类二十烷酸的衍生化反应 | 第80页 |
| 2.6 质谱条件优化样品的制备 | 第80页 |
| 2.7 仪器分析条件 | 第80-84页 |
| 2.8 数据处理和统计分析 | 第84页 |
| 3 实验结果和讨论 | 第84-104页 |
| 3.1 类二十烷酸衍生化条件的优化 | 第84-88页 |
| 3.2 衍生化类二十烷酸的质谱检测灵敏度 | 第88-89页 |
| 3.3 衍生化类二十烷酸的放置稳定性 | 第89-91页 |
| 3.4 衍生化类二十烷酸的UHPLC-MS/MS分析方法 | 第91-94页 |
| 3.5 方法验证 | 第94-98页 |
| 3.6 急性心肌缺血损伤模型大鼠血浆和心肌中类二十烷酸的表征和相关性分析 | 第98-104页 |
| 4 结论 | 第104页 |
| 参考文献 | 第104-107页 |
| 第四章 基于新型高效衍生化策略的内源性脂肪醛类化合物全面表征分析的HPLC-MS/MS法 | 第107-134页 |
| 1 仪器设备与实验材料 | 第108-109页 |
| 1.1 仪器设备 | 第108页 |
| 1.2 实验材料 | 第108-109页 |
| 2 实验方法 | 第109-113页 |
| 2.1 标准溶液和线性考察标准工作溶液的制备 | 第109页 |
| 2.2 双侧颈总动脉结扎致脑缺血大鼠模型的建立 | 第109-110页 |
| 2.3 生物样品的前处理 | 第110-111页 |
| 2.4 脂肪醛的衍生化反应及衍生化效率考察 | 第111-112页 |
| 2.5 质谱条件优化样品的制备 | 第112页 |
| 2.6 仪器分析条件 | 第112-113页 |
| 2.7 数据处理和统计分析 | 第113页 |
| 3 实验结果和讨论 | 第113-129页 |
| 3.1 脂肪醛衍生化条件优化 | 第113-117页 |
| 3.2 衍生化脂肪醛的色谱分离效率 | 第117页 |
| 3.3 衍生化脂肪醛的质谱检测灵敏度 | 第117-118页 |
| 3.4 衍生化脂肪醛的HPLC-MS/MS分析 | 第118-120页 |
| 3.5 基于通用特征质谱扫描参数的脂肪醛全面表征 | 第120-122页 |
| 3.6 干扰化合物的过滤 | 第122-126页 |
| 3.7 脂肪醛的同位素稀释法定量分析 | 第126-128页 |
| 3.8 脑缺血模型大鼠血浆和脑组织中脂肪醛的分析 | 第128-129页 |
| 4 结论 | 第129-131页 |
| 参考文献 | 第131-134页 |
| 第五章 基于UHPLC-Q-TOF-MS的酸性鞘糖脂全面分析和识别新策略研究 | 第134-176页 |
| 1 仪器设备与实验材料 | 第137页 |
| 1.1 仪器设备 | 第137页 |
| 1.2 实验材料 | 第137页 |
| 2 实验方法 | 第137-140页 |
| 2.1 标准工作溶液的制备 | 第137-138页 |
| 2.2 双侧颈总动脉结扎致脑缺血大鼠模型的建立 | 第138-139页 |
| 2.3 生物样品的前处理 | 第139页 |
| 2.4 方法验证 | 第139-140页 |
| 2.5 仪器分析条件 | 第140页 |
| 2.6 数据处理和统计分析 | 第140页 |
| 3 实验结果和讨论 | 第140-172页 |
| 3.1 具有不同寡糖链的神经节苷脂同分异构体的分离 | 第140-145页 |
| 3.2 全面分析和识别对照品中的AGSL | 第145-148页 |
| 3.3 基于AGSL神经酰胺碳保留时间-结构的数学模型建立 | 第148-151页 |
| 3.4 生物样品中AGSL快速识别和鉴定的新策略构建 | 第151-161页 |
| 3.5 AGSL定量分析方法验证 | 第161-162页 |
| 3.6 大鼠脑组织中AGSL的分析 | 第162-172页 |
| 4 结论 | 第172页 |
| 参考文献 | 第172-176页 |
| 第六章 基于UHPLC-MS/MS的脂肪酸酯的全面分析和定量分析新策略研究 | 第176-205页 |
| 1 仪器设备与实验材料 | 第177-178页 |
| 1.1 仪器设备 | 第177页 |
| 1.2 实验材料 | 第177-178页 |
| 2 实验方法 | 第178-181页 |
| 2.1 标准溶液的制备 | 第178页 |
| 2.2 高脂血症金黄地鼠动物模式建立 | 第178-179页 |
| 2.3 生物样品的前处理 | 第179页 |
| 2.4 方法验证 | 第179-180页 |
| 2.5 仪器分析条件 | 第180页 |
| 2.6 数据处理和统计分析 | 第180-181页 |
| 3 实验结果和讨论 | 第181-202页 |
| 3.1 UHPLC-MS/MS分析条件的优化 | 第181-185页 |
| 3.2 UHPLC-Q-TOF-MS全面识别脂肪组织中的脂肪酸酯 | 第185-190页 |
| 3.3 UHPLC-MS/MS定量分析方法验证 | 第190-192页 |
| 3.4 金黄地鼠高脂血症模型的建立和评价 | 第192-194页 |
| 3.5 金黄地鼠白色脂肪组织中的脂肪酸酯分析 | 第194-202页 |
| 4 结论 | 第202-203页 |
| 参考文献 | 第203-205页 |
| 英文缩略词 | 第205-209页 |
| 致谢 | 第209-210页 |
| 个人简历 | 第210-212页 |
| 附表1 | 第212-222页 |
| 附表2 | 第222-233页 |
| 附表3 | 第233-253页 |
