| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 前言 | 第17-18页 |
| 文献回顾 | 第18-38页 |
| 第一部分 6-OHDA对DA神经元中线粒体融合和分裂蛋白的作用 | 第38-46页 |
| 1 材料 | 第38-39页 |
| 1.1 细胞系 | 第38页 |
| 1.2 实验试剂 | 第38-39页 |
| 1.3 实验仪器 | 第39页 |
| 2 方法 | 第39-42页 |
| 2.1 细胞培养 | 第39-40页 |
| 2.2 6-OHDA处理细胞 | 第40页 |
| 2.3 蛋白免疫印迹 | 第40-42页 |
| 2.4 统计学方法 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 第二部分 MitoQ改善6-OHDA致线粒体动力学改变作用机制的研究 | 第46-62页 |
| 1 材料 | 第46-48页 |
| 1.1 细胞系以及MitoQ | 第46页 |
| 1.2 实验试剂 | 第46-47页 |
| 1.3 实验仪器 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-53页 |
| 2.1 细胞培养 | 第48页 |
| 2.2 MitoQ处理细胞 | 第48页 |
| 2.3 免疫印迹 | 第48页 |
| 2.4 实时定量PCR | 第48-50页 |
| 2.5 细胞转染以及药物干预 | 第50-52页 |
| 2.6 蛋白印迹 | 第52页 |
| 2.7 免疫荧光细胞染色 | 第52-53页 |
| 2.8 统计学方法 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-59页 |
| 3.1 MitoQ促进线粒体融合蛋白Mfn2的表达 | 第53-55页 |
| 3.2 MitoQ改善6-OHDA致线粒体融合蛋白Mfn2表达的降低并可能促进线粒体的融合 | 第55-57页 |
| 3.3 MitoQ通过调节PGC-1α增强对线粒体融合蛋白Mfn2的表达 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-62页 |
| 第三部分 MitoQ对DA神经元保护作用的研究 | 第62-78页 |
| 1 材料 | 第62-64页 |
| 1.1 细胞系 | 第62页 |
| 1.2 实验动物 | 第62页 |
| 1.3 实验试剂 | 第62-64页 |
| 1.4 实验仪器 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-69页 |
| 2.1 细胞培养 | 第64页 |
| 2.2 线粒体形态检测 | 第64-65页 |
| 2.3 线粒体膜电位(MMP)ΔΨm检测 | 第65页 |
| 2.4 ROS检测 | 第65-66页 |
| 2.5 TUNEL检测 | 第66页 |
| 2.6 细胞转染以及药物干预 | 第66-67页 |
| 2.7 细胞蛋白免疫印迹 | 第67页 |
| 2.8 动物PD模型建立和药物处理 | 第67页 |
| 2.9 动物灌注取脑 | 第67-68页 |
| 2.10 免疫组织荧光染色 | 第68-69页 |
| 2.11 组织蛋白免疫印迹 | 第69页 |
| 2.12 统计学方法 | 第69页 |
| 3 结果 | 第69-75页 |
| 3.1 MitoQ可以减轻6-OHDA诱导的线粒体形态和功能的改变 | 第69-72页 |
| 3.2 MitoQ可以减轻6-OHDA引起的凋亡 | 第72-73页 |
| 3.3 MitoQ6-OHDA诱导的动物模型中对DA神经元产生保护作用 | 第73-75页 |
| 4 讨论 | 第75-78页 |
| 小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-111页 |
| 个人简历和研究成果 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
