| 第一部分 儿童下呼吸道菌群多样性 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第二部分 LPS对哮喘小鼠辅助性T细胞分化的影响 | 第6-16页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-16页 |
| 英文缩略语表 | 第16-17页 |
| 第一部分 儿童下呼吸道菌群多样性 | 第17-32页 |
| 第一章 前言 | 第17-20页 |
| 1.1 肺炎常见病原体 | 第17-18页 |
| 1.2 16S rDNA序列分析技术及健康人下呼吸道菌群构成 | 第18页 |
| 1.3 肺炎患者气道菌群改变对肺炎的影响 | 第18-19页 |
| 1.4 肺炎患者气道菌群改变引起的代谢组学差异 | 第19-20页 |
| 第二章 资料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1 资料收集 | 第20-21页 |
| 2.2 数据处理 | 第21-23页 |
| 第三章 实验结果 | 第23-29页 |
| 3.1. 肺炎患者气道主要菌门 | 第23-24页 |
| 3.2 上下呼吸道菌群及不同类型肺炎气道菌群总体差异 | 第24-25页 |
| 3.3 上下呼吸道菌群多样性及丰度差异 | 第25-26页 |
| 3.4 细菌性肺炎和非细菌性肺炎差异菌种 | 第26-27页 |
| 3.5 细菌性肺炎与非细菌性肺炎气道菌群代谢差异 | 第27-29页 |
| 第四章 讨论 | 第29-31页 |
| 4.1 肺炎患者呼吸道菌群结构 | 第29页 |
| 4.2 支气管肺炎上下呼吸道菌群差异 | 第29-30页 |
| 4.3 细菌性肺炎及非细菌性肺炎气道菌群差异 | 第30页 |
| 4.4 细菌性肺炎及非细菌性肺炎代谢组学差异 | 第30-31页 |
| 第五章 结论 | 第31-32页 |
| 第二部分 LPS对哮喘小鼠辅助性T细胞分化的影响 | 第32-61页 |
| 第一章 前言 | 第32-42页 |
| 1.1 儿童支气管哮喘流行病学 | 第33-34页 |
| 1.2 儿童支气管哮喘表型和内型 | 第34页 |
| 1.3 哮喘与四种辅助性T细胞 | 第34-36页 |
| 1.3.1 哮喘与Th1/Th2 | 第35-36页 |
| 1.3.2 哮喘与Th17/Treg | 第36页 |
| 1.4 病原菌感染对支气管哮喘的影响 | 第36-37页 |
| 1.5 哮喘患者气道菌群改变 | 第37-39页 |
| 1.6 哮喘气道菌群改变对Th细胞分化的影响 | 第39-40页 |
| 1.7 脂多糖对哮喘Th细胞分化的影响 | 第40-42页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第42-53页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-45页 |
| 2.1.1 实验小鼠 | 第42页 |
| 2.1.2 抗体 | 第42页 |
| 2.1.3 主要试剂和耗材 | 第42-43页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第43页 |
| 2.1.5 主要溶液配制 | 第43-45页 |
| 2.2 实验方法 | 第45-53页 |
| 2.2.1 ELISA检测细胞因子 | 第45-46页 |
| 2.2.2 小鼠眼球取血 | 第46页 |
| 2.2.3 小鼠中取肺泡灌洗液 | 第46-47页 |
| 2.2.4 肺组织石蜡切片制作 | 第47-48页 |
| 2.2.5 组织切片染色 | 第48-49页 |
| 2.2.6 提取肺组织RNA | 第49-50页 |
| 2.2.7 逆转录 | 第50页 |
| 2.2.8 qPCR反应体系 | 第50-51页 |
| 2.2.9 qPCR反应程序 | 第51页 |
| 2.2.10 哮喘鼠造模 | 第51-52页 |
| 2.2.11 相关引物设计及序列 | 第52页 |
| 2.2.12 数据处理 | 第52-53页 |
| 第三章 实验结果 | 第53-57页 |
| 3.1 LPS对T细胞分化的影响 | 第53-57页 |
| 3.1.1 哮喘鼠模型构建 | 第53页 |
| 3.1.2 行为学改变 | 第53页 |
| 3.1.3 HE染色观察LPS对哮喘小鼠肺组织影响 | 第53-54页 |
| 3.1.4 蛋白水平检测T细胞相关细胞因子的表达变化 | 第54-55页 |
| 3.1.5 转录水平检测T细胞相关因子的表达变化 | 第55-57页 |
| 第四章 讨论 | 第57-60页 |
| 4.1 LPS影响下哮喘中Th1/Th2细胞比例失衡 | 第57-58页 |
| 4.2 LPS对哮喘中Th17/Treg细胞比例影响 | 第58-60页 |
| 第五章 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
