| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 辅酶Q10的概述 | 第13页 |
| 1.2 辅酶Q10理化性质 | 第13-14页 |
| 1.3 辅酶Q10在自然界中的分布和含量 | 第14-15页 |
| 1.4 辅酶Q10的生理作用 | 第15-16页 |
| 1.5 辅酶Q10的应用 | 第16-18页 |
| 1.5.1 辅酶Q10在医药方面的应用 | 第16-17页 |
| 1.5.2 辅酶Q10在保健食品方面的应用 | 第17页 |
| 1.5.3 辅酶Q10在化妆品方面的应用 | 第17-18页 |
| 1.6 辅酶Q10的生产方法 | 第18-22页 |
| 1.6.1 生物提取法 | 第18页 |
| 1.6.2 化学合成法 | 第18-20页 |
| 1.6.3 植物细胞培养法 | 第20页 |
| 1.6.4 微生物发酵法 | 第20-22页 |
| 1.7 辅酶Q10的分离与纯化方法 | 第22-26页 |
| 1.7.1 辅酶Q10的提取方法 | 第22-24页 |
| 1.7.1.1 溶剂萃取法 | 第22-23页 |
| 1.7.1.2 皂化法 | 第23-24页 |
| 1.7.1.3 超声波提取法 | 第24页 |
| 1.7.2 辅酶Q10的纯化方法 | 第24-26页 |
| 1.7.2.1 硅胶或白炭黑柱层析法 | 第24-25页 |
| 1.7.2.2 大孔树脂吸附法 | 第25页 |
| 1.7.2.3 结晶法 | 第25-26页 |
| 1.8 辅酶Q10的检测方法 | 第26-27页 |
| 1.8.1 定性检测方法 | 第26页 |
| 1.8.1.1 化学与物理结合法 | 第26页 |
| 1.8.1.2 红外和紫外吸收光谱法 | 第26页 |
| 1.8.1.3 薄层层析法 | 第26页 |
| 1.8.2 定量检测方法 | 第26-27页 |
| 1.8.2.1 HPLC检测法 | 第27页 |
| 1.8.2.2 紫外分光光度结合薄层层析法 | 第27页 |
| 1.8.2.3 可见光分光光度法 | 第27页 |
| 1.9 本论文研究意义及研究内容 | 第27-31页 |
| 1.9.1 本论文研究意义 | 第27-29页 |
| 1.9.2 本论文研究内容 | 第29-31页 |
| 第二章 辅酶Q10湿菌丝体萃取方法的开发 | 第31-47页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验仪器、材料及试剂 | 第31-32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 2.3.1 发酵液的固液分离 | 第32页 |
| 2.3.2 萃取溶剂的筛选 | 第32页 |
| 2.3.3 湿菌丝体的破碎 | 第32页 |
| 2.3.4 混合液的脱水 | 第32-33页 |
| 2.3.5 陶瓷膜的萃取 | 第33页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第33-44页 |
| 2.4.1 发酵液制备的简介 | 第33-34页 |
| 2.4.1.1 接种体制备 | 第33页 |
| 2.4.1.2 发酵液的制备 | 第33-34页 |
| 2.4.2 本实验发酵液的处理 | 第34-35页 |
| 2.4.3 全自动高压板框的进料压力选择 | 第35-36页 |
| 2.4.4 全自动高压板框压榨压力和湿菌丝体含水率的考察 | 第36页 |
| 2.4.5 湿菌丝体在不同溶剂中的分散情况 | 第36-37页 |
| 2.4.6 乙酸乙酯、无水乙醇、丙酮和湿菌丝体的萃取考察 | 第37-38页 |
| 2.4.7 不同温度下,湿菌丝体在丙酮溶剂中破碎的研究 | 第38-39页 |
| 2.4.8 辅酶Q10成品在不同丙酮度溶剂中的溶解考察 | 第39-40页 |
| 2.4.9 脱水过程中,辅酶Q10单位、脱水废液中丙酮含量的变化考察 | 第40-41页 |
| 2.4.10 不同萃取温度对脱水混合液的萃取情况分析 | 第41-42页 |
| 2.4.11 萃取丙酮用量和萃取终点、残渣辅酶Q10含量的关系考察 | 第42-43页 |
| 2.4.12 产业化设备在本工艺中的应用 | 第43-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-47页 |
| 第三章 不同的结晶条件纯化辅酶Q10的研究 | 第47-59页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 实验仪器、材料及试剂 | 第47页 |
| 3.3 实验方法 | 第47-48页 |
| 3.3.1 混合萃取液中辅酶Q10含量对结晶影响的研究 | 第47-48页 |
| 3.3.2 结晶温度影响粗品品质、母液中辅酶Q10含量的研究 | 第48页 |
| 3.3.3 结晶粗品过滤及溶解的研究 | 第48页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第48-56页 |
| 3.4.1 混合萃取液中辅酶Q10含量对结晶的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.2 萃取液混合单位满足结晶要求的研究 | 第49-52页 |
| 3.4.2.1 萃取液混合浓缩方式的考察 | 第50-51页 |
| 3.4.2.2 萃取液选择合适体积进行混合的分析 | 第51-52页 |
| 3.4.3 萃取液混合含量和结晶温度、母液中辅酶Q10含量之间的分析 | 第52-54页 |
| 3.4.4 结晶时间和母液中辅酶Q10含量之间的关系分析 | 第54-55页 |
| 3.4.5 搅拌转速和粗品晶型之间的研究 | 第55-56页 |
| 3.4.6 粗品过滤、溶解的条件考察 | 第56页 |
| 3.5 本章小结 | 第56-59页 |
| 第四章 辅酶Q10层析、结晶的研究 | 第59-77页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 实验仪器、材料及试剂 | 第59-60页 |
| 4.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.3.1 解析剂极性溶剂的对比选择 | 第60页 |
| 4.3.2 层析硅胶再生方式的优化研究 | 第60页 |
| 4.3.3 层析收集液结晶温度和结晶颗粒的研究 | 第60页 |
| 4.3.4 结晶液过滤采用芬达过滤装置的研究 | 第60-61页 |
| 4.3.5 辅酶Q10结晶工艺及设备的描述 | 第61页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第61-74页 |
| 4.4.1 不同溶剂系统对硅胶层析的理论分析 | 第61-62页 |
| 4.4.2 不同溶剂系统对硅胶层析的研究 | 第62-63页 |
| 4.4.3 乙酸乙酯作为硅胶层析洗脱溶剂的浓度研究 | 第63页 |
| 4.4.4 丙酮作为硅胶层析洗脱溶剂的浓度研究 | 第63-65页 |
| 4.4.5 乙酸乙酯和丙酮作为硅胶再生剂的对比研究 | 第65-66页 |
| 4.4.6 丙酮作为再生剂的参数研究 | 第66-67页 |
| 4.4.7 丙酮作为再生剂实现在线再生的可行性研究 | 第67-68页 |
| 4.4.8 丙酮在线再生硅胶的套用次数研究 | 第68-69页 |
| 4.4.9 结晶温度、粗品颗粒大小和芬达过滤筛网的研究 | 第69-70页 |
| 4.4.10 芬达过滤器在结晶液过滤的应用研究 | 第70-71页 |
| 4.4.11 辅酶Q10工艺及设备的探讨 | 第71-72页 |
| 4.4.12 产业化设备在本工艺中的应用 | 第72-74页 |
| 4.4.13 辅酶Q10分离纯化生产新旧工艺对比 | 第74页 |
| 4.5 本章小结 | 第74-77页 |
| 第五章 结论与展望 | 第77-81页 |
| 5.1 结论 | 第77-79页 |
| 5.2 展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
