| 中文摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-19页 |
| 1.1 研究目的与意义 | 第12页 |
| 1.2 国内外研究背景 | 第12-17页 |
| 1.2.1 松针资源现状 | 第12-13页 |
| 1.2.2 松针的组成成分 | 第13-14页 |
| 1.2.3 纤维素的结构 | 第14-15页 |
| 1.2.4 纤维素生物降解研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2.5 微生物菌剂研究动态 | 第16页 |
| 1.2.6 纤维素降解菌系的研究动态 | 第16-17页 |
| 1.3 课题来源及主要研究内容 | 第17-19页 |
| 1.3.1 课题来源 | 第17页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第17-18页 |
| 1.3.3 技术路线 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 土壤样品 | 第19页 |
| 2.1.2 松针来源 | 第19页 |
| 2.1.3 培养基配方 | 第19-20页 |
| 2.1.4 实验所用药品 | 第20页 |
| 2.1.5 实验所用试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.1.6 实验所用主要仪器 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 松针纤维素降解菌的分离与筛选 | 第21页 |
| 2.2.2 菌株的鉴定 | 第21-22页 |
| 2.2.3 纤维素酶活的测定 | 第22-24页 |
| 2.2.4 松针失重率的测定 | 第24页 |
| 2.2.5 组合菌群的固态发酵条件优化 | 第24页 |
| 2.2.6 红外光谱分析 | 第24-25页 |
| 2.2.7 电镜观察 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-49页 |
| 3.1 菌株的分离和初筛 | 第26页 |
| 3.2 液态发酵复筛 | 第26-28页 |
| 3.3 菌株的鉴定 | 第28-30页 |
| 3.3.1 菌株的形态学鉴定 | 第28-29页 |
| 3.3.2 菌株的分子鉴定 | 第29页 |
| 3.3.3 18SrDNA序列的系统发育树的构建 | 第29-30页 |
| 3.4 菌株混合发酵培养 | 第30-33页 |
| 3.5 松针失重率的测定 | 第33页 |
| 3.6 组合38/ZJ-8/ZJ-13的固态发酵条件优化 | 第33-35页 |
| 3.6.1 氮源对产酶的影响 | 第33-34页 |
| 3.6.2 初始pH值对产酶的影响 | 第34-35页 |
| 3.6.3 添加表面活性剂对产酶的影响 | 第35页 |
| 3.7 组合38/ZJ-8/ZJ-13降解松针过程中的红外吸收光谱变化 | 第35-41页 |
| 3.8 松针生物降解过程的扫描电镜观察 | 第41-49页 |
| 3.8.1 松针结构的扫描电镜观察 | 第41-43页 |
| 3.8.2 松针横断面在不同降解阶段的扫描电镜观察 | 第43-45页 |
| 3.8.3 松针表面在不同降解阶段的扫描电镜观察 | 第45-47页 |
| 3.8.4 未接种的松针振荡培养75天的扫描电镜观察 | 第47-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-53页 |
| 5.1 菌株筛选及鉴定 | 第51页 |
| 5.2 菌株混合培养研究 | 第51页 |
| 5.3 组合38/ZJ-8/ZJ-13的固态发酵条件研究 | 第51页 |
| 5.4 松针生物降解过程中红外吸收光谱变化 | 第51页 |
| 5.5 松针生物降解过程的扫描电镜观察 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 附录 | 第59-62页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第62页 |
