| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-23页 |
| 1.1 CLA概述 | 第10-11页 |
| 1.2 CLA生理功能 | 第11-13页 |
| 1.2.1 抗癌作用 | 第11页 |
| 1.2.2 调节身体组成 | 第11-12页 |
| 1.2.3 调节免疫功能的作用 | 第12页 |
| 1.2.4 抗粥状动脉硬化作用 | 第12页 |
| 1.2.5 生长促进因子 | 第12-13页 |
| 1.2.6 其他作用 | 第13页 |
| 1.3 CLA的合成及转化 | 第13-19页 |
| 1.3.1 化学合成 | 第13-15页 |
| 1.3.2 生物合成 | 第15-19页 |
| 1.4 CLA的分析方法 | 第19-20页 |
| 1.4.1 紫外(UV)分光光度法 | 第19页 |
| 1.4.2 气相-傅里叶变换红外光谱联同法(GC-FTIR) | 第19页 |
| 1.4.3 气相色谱法(GC) | 第19页 |
| 1.4.4 银离子高效液相色谱法(Ag~+-HPLC) | 第19-20页 |
| 1.4.5 气-质联用法(GC-MS) | 第20页 |
| 1.4.6 核磁光谱法 | 第20页 |
| 1.5 CLA的发展前景 | 第20-21页 |
| 1.5.1 CLA添加物的安全性 | 第20页 |
| 1.5.2 CLA在食品工业中的应用 | 第20-21页 |
| 1.6 本研究的内容与意义 | 第21-23页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第21页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第21-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-36页 |
| 2.1 试验材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 主要试验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 主要试验仪器 | 第24页 |
| 2.1.3 培养基 | 第24页 |
| 2.1.4 菌种 | 第24-25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-29页 |
| 2.2.1 混菌完整细胞生物合成CLA的试验操作流程 | 第25页 |
| 2.2.2 菌种活化 | 第25-26页 |
| 2.2.3 乳酸菌数的测定 | 第26页 |
| 2.2.4 LA乳化液的制备 | 第26页 |
| 2.2.5 诱导培养 | 第26页 |
| 2.2.6 完整细胞的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.7 细胞湿重与干重的比值及菌体生物量的确定 | 第27页 |
| 2.2.8 完整细胞合成CLA | 第27页 |
| 2.2.9 CLA的分析与检测 | 第27-28页 |
| 2.2.10 单菌完整细胞与混菌完整细胞生物合成CLA的比较 | 第28页 |
| 2.2.11 菌体生长曲线的绘制 | 第28页 |
| 2.2.12 pH值的测定 | 第28页 |
| 2.2.13 完整细胞生物合成CLA混菌比例的确定 | 第28-29页 |
| 2.3 混菌完整细胞生物合成CLA的条件研究 | 第29-36页 |
| 2.3.1 混菌完整细胞细胞生物合成CLA营养条件的研究 | 第29-31页 |
| 2.3.2 诱导培养条件的研究 | 第31-32页 |
| 2.3.3 透性化处理对完整细胞生物合成CLA的影响 | 第32-34页 |
| 2.3.4 完整细胞生物合成CLA的反应条件研究 | 第34-36页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第36-64页 |
| 3.1 CLA分析方法的确立 | 第36-37页 |
| 3.1.1 CLA紫外波长的扫描 | 第36页 |
| 3.1.2 气相色谱的分析自制LA与CLA甲酯标准品 | 第36-37页 |
| 3.2 完整细胞生物合成CLA | 第37-62页 |
| 3.2.1 吸光度与菌体浓度的标准曲线及细胞湿重与干重比 | 第37-38页 |
| 3.2.2 菌株生长曲线与pH值的变化 | 第38页 |
| 3.2.3 单菌完整细胞与混菌完整细胞生物合成CLA的比较 | 第38-39页 |
| 3.2.4 完整细胞生物合成CLA的混菌比例 | 第39-40页 |
| 3.2.5 混菌完整细胞生物合成CLA的营养条件 | 第40-46页 |
| 3.2.6 混菌完整细胞生物合成CLA的诱导条件 | 第46-50页 |
| 3.2.7 透性化试剂对完整细胞生物合成CLA的影响 | 第50-53页 |
| 3.2.8 完整细胞生物合成CLA的反应条件 | 第53-62页 |
| 3.3 完整细胞生物合成CLA条件对CLA异构体分布影响 | 第62-64页 |
| 第四章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 附录 | 第70页 |
