| 符号说明 | 第5-10页 |
| 中文摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 1 前言 | 第18-38页 |
| 1.1 光破坏防御机制 | 第18-25页 |
| 1.1.1 状态转换 | 第18页 |
| 1.1.2 PSII的自身修复 | 第18-19页 |
| 1.1.3 热耗散 | 第19-21页 |
| 1.1.4 环式电子传递 | 第21-22页 |
| 1.1.4.1 PSII环式电子传递 | 第21-22页 |
| 1.1.4.2 PSI环式电子传递 | 第22页 |
| 1.1.5 活性氧清除机制 | 第22-23页 |
| 1.1.5.1 抗氧化物质 | 第22-23页 |
| 1.1.5.2 依赖于酶促的活性氧清除机制 | 第23页 |
| 1.1.6 光呼吸 | 第23-24页 |
| 1.1.7 叶绿体外的光破坏防御机制 | 第24-25页 |
| 1.1.7.1 TCA循环 | 第24-25页 |
| 1.1.7.2 UCP蛋白 | 第25页 |
| 1.1.7.3 线粒体交替氧化酶途径 | 第25页 |
| 1.2 线粒体交替氧化酶途径的光破坏防御功能 | 第25-36页 |
| 1.2.1 线粒体交替氧化酶途径 | 第25-27页 |
| 1.2.2 线粒体交替氧化酶的前期研究 | 第27-28页 |
| 1.2.3 线粒体交替氧化酶的调控 | 第28-29页 |
| 1.2.3.1 线粒体交替氧化酶的氧化还原状态 | 第28页 |
| 1.2.3.2 酮酸对于线粒体交替氧化酶氧化还原状态的调节 | 第28页 |
| 1.2.3.3 其他对于线粒体交替氧化酶氧化还原状态的调节 | 第28-29页 |
| 1.2.4 线粒体交替氧化酶与生物及非生物胁迫 | 第29-33页 |
| 1.2.4.1 线粒体交替氧化酶与生物胁迫 | 第29-30页 |
| 1.2.4.2 线粒体交替氧化酶与干旱胁迫 | 第30-31页 |
| 1.2.4.3 线粒体交替氧化酶与营养缺乏 | 第31页 |
| 1.2.4.4 线粒体交替氧化酶与盐胁迫 | 第31-32页 |
| 1.2.4.5 线粒体交替氧化酶与氧胁迫 | 第32页 |
| 1.2.4.6 线粒体交替氧化酶与重金属胁迫 | 第32-33页 |
| 1.2.5 线粒体交替氧化酶与光合作用的关系及具体机制 | 第33-34页 |
| 1.2.6 低温胁迫 | 第34-36页 |
| 1.3 本研究的目的和意义 | 第36-38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-50页 |
| 2.1 实验材料 | 第38页 |
| 2.2 材料处理 | 第38-40页 |
| 2.2.1 线粒体电子传递抑制剂处理 | 第38-39页 |
| 2.2.2 不同温度(低温)处理 | 第39页 |
| 2.2.3 不同光强处理 | 第39页 |
| 2.2.4 不同气体环境处理 | 第39-40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-49页 |
| 2.3.1 植物基因组DNA的提取 | 第40页 |
| 2.3.2 植物PCR的鉴定 | 第40-41页 |
| 2.3.3 植物RNA的提取 | 第41-42页 |
| 2.3.4 植物RNA的逆转录过程 | 第42-43页 |
| 2.3.5 植物基因表达的检测(qRT-PCR) | 第43-44页 |
| 2.3.6 叶绿素a荧光诱导动力学OJIP曲线的测定及JIP-test分析 | 第44-45页 |
| 2.3.7 叶绿素荧光淬灭分析 | 第45页 |
| 2.3.8 总呼吸速率和交替呼吸速率的测定 | 第45-46页 |
| 2.3.9 NADP-苹果酸脱氢酶酶活的测定 | 第46页 |
| 2.3.10 植物总蛋白的提取 | 第46-47页 |
| 2.3.11 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)和Westernblot蛋白表达分析 | 第47-48页 |
| 2.3.12 光合碳同化氧敏感性的测定 | 第48页 |
| 2.3.13 关光后二氧化碳猝发(PIB)的测定 | 第48页 |
| 2.3.14 游离氨基酸含量的测定 | 第48-49页 |
| 2.4 统计分析 | 第49-50页 |
| 3 结果与分析 | 第50-79页 |
| 3.1 低温下耐冷植株拟南芥AOX的光破坏防御作用 | 第50-61页 |
| 3.1.1 拟南芥材料的鉴定 | 第50-51页 |
| 3.1.2 不同拟南芥材料的生长表型 | 第51页 |
| 3.1.3 不同温度下拟南芥黑暗及强光处理后的总呼吸速率 | 第51-52页 |
| 3.1.4 不同温度下拟南芥在黑暗及强光处理后AOX途径的呼吸速率 | 第52-53页 |
| 3.1.5 不同温度下拟南芥黑暗及强光处理后AOX途径的呼吸速率占总呼吸速率的比例 | 第53页 |
| 3.1.6 不同温度下拟南芥黑暗及强光处理下AOX蛋白的表达水平 | 第53-54页 |
| 3.1.7 抗霉素A对于环式电子传递的影响 | 第54-55页 |
| 3.1.8 不同温度下拟南芥的PSII光抑制 | 第55-56页 |
| 3.1.9 不同处理条件下拟南芥叶片中NADP-MDH酶活 | 第56-57页 |
| 3.1.10 不同温度下拟南芥光呼吸受抑后的PSII光抑制 | 第57-58页 |
| 3.1.11 不同温度下拟南芥叶片的氧敏感性 | 第58-59页 |
| 3.1.12 不同温度下拟南芥叶片GDC蛋白的检测 | 第59页 |
| 3.1.13 不同温度下拟南芥叶片中光呼吸代谢中氨基酸含量的检测 | 第59-61页 |
| 3.2 低温下冷敏感植株黄瓜和玉米AOX的光破坏防御作用 | 第61-68页 |
| 3.2.1 不同温度下黄瓜和玉米的总呼吸速率 | 第61-62页 |
| 3.2.2 不同温度下黄瓜和玉米AOX途径的呼吸速率 | 第62页 |
| 3.2.3 不同温度下黄瓜和玉米AOX途径的呼吸速率占总呼吸速率的比值 | 第62-63页 |
| 3.2.4 不同温度下黄瓜和玉米AOX蛋白的表达水平 | 第63页 |
| 3.2.5 不同温度及处理条件下黄瓜及玉米的PSII光抑制 | 第63-65页 |
| 3.2.6 不同温度光呼吸受抑下黄瓜及玉米的PSII光抑制 | 第65-66页 |
| 3.2.7 不同温度下黄瓜及玉米的光后二氧化碳猝发 | 第66-67页 |
| 3.2.8 不同温度下黄瓜和玉米的氧敏感性 | 第67-68页 |
| 3.2.9 不同温度下黄瓜和玉米在黑暗及强光下GDC蛋白的表达 | 第68页 |
| 3.3 线粒体交替氧化酶(AOX)的光破坏防御作用与苹果酸-草酰乙酸穿梭的关系 | 第68-78页 |
| 3.3.1 拟南芥材料的鉴定 | 第68-69页 |
| 3.3.2 拟南芥材料的生长表型 | 第69-70页 |
| 3.3.3 不同拟南芥材料的总呼吸速率 | 第70页 |
| 3.3.4 不同拟南芥材料的AOX途径的呼吸速率 | 第70-71页 |
| 3.3.5 不同拟南芥材料AOX途径的呼吸速率占总呼吸速率的比值 | 第71-72页 |
| 3.3.6 AOX受抑对野生型及nadp-mdh突变体PSII光抑制的影响 | 第72-73页 |
| 3.3.7 AOX受抑对野生型及nadp-mdh突变体强光下PSII电子传递的影响 | 第73页 |
| 3.3.8 AOX途径缺失对野生型以及nadp-mdh突变体PSII强光光抑制的影响 | 第73-74页 |
| 3.3.9 AOX途径缺失对野生型以及nadp-mdh突变体PSII活性的影响 | 第74-75页 |
| 3.3.10 不同拟南芥光呼吸受抑后对于PSII光抑制的影响 | 第75-76页 |
| 3.3.11 不同拟南芥材料的氧敏感性 | 第76-77页 |
| 3.3.12 不同拟南芥材料的光后二氧化碳猝发 | 第77-78页 |
| 3.4 线粒体交替氧化酶(AOX)的光破坏防御作用与光呼吸的关系 | 第78-79页 |
| 4 讨论 | 第79-85页 |
| 4.1 低温下AOX途径不起明显的的光破坏防御作用 | 第79-80页 |
| 4.2 AOX的光破坏防御作用与苹果酸-草酰乙酸穿梭的关系 | 第80-82页 |
| 4.3 AOX的光破坏防御作用与光呼吸之间的关系 | 第82-85页 |
| 5 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第103页 |
