| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-18页 |
| 1.1 植物多酚概况 | 第8-9页 |
| 1.1.1 茶多酚 | 第8-9页 |
| 1.1.2 石榴皮多酚 | 第9页 |
| 1.2 胰岛素抵抗概况 | 第9-15页 |
| 1.2.1 糖尿病 | 第9-10页 |
| 1.2.2 胰岛素抵抗 | 第10-15页 |
| 1.2.2.1 胰岛素抵抗产生机制 | 第10页 |
| 1.2.2.2 胰岛素抵抗与胰岛素信号通路 | 第10-12页 |
| 1.2.2.3 胰岛素抵抗与脂肪因子 | 第12-14页 |
| 1.2.2.4 胰岛素抵抗与PPARγ | 第14-15页 |
| 1.2.2.5 糖尿病治疗药物分类 | 第15页 |
| 1.3 本课题的研究内容和意义 | 第15-18页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第15-16页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第16-18页 |
| 第2章 试验材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 试验材料与试剂 | 第18-22页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要试剂配制方法 | 第20-22页 |
| 2.2 主要仪器和设备 | 第22-23页 |
| 2.3 试验方法 | 第23-34页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第23-24页 |
| 2.3.2 受试物样品的配制 | 第24页 |
| 2.3.3 TP、PPPs对3T3-L1前脂肪细胞增殖和分化的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.4 3T3-L1前脂肪细胞诱导分化和油红O染色法鉴定 | 第25-26页 |
| 2.3.4.1 鸡尾酒诱导法诱导3T3-L1前脂肪细胞分化 | 第25页 |
| 2.3.4.2 油红O染色鉴定脂肪细胞分化情况 | 第25-26页 |
| 2.3.5 脂肪细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第26页 |
| 2.3.6 葡萄糖消耗量的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.7 实时定量PCR检测相关基因mRNA相对表达量 | 第27-31页 |
| 2.3.7.1 细胞总RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.3.7.2 反转录cDNA | 第28页 |
| 2.3.7.3 相关引物设计 | 第28-29页 |
| 2.3.7.4 各基因PCR体系退火温度的优化 | 第29-30页 |
| 2.3.7.5 实时定量PCR (Real-Time PCR)反应 | 第30-31页 |
| 2.3.8 Western Blot检测相关蛋白表达 | 第31-32页 |
| 2.3.9 数据处理 | 第32-34页 |
| 第3章 结果与分析 | 第34-50页 |
| 3.1 TP、PPPs对3T3-L1前脂肪细胞增殖及分化的影响 | 第34-38页 |
| 3.1.1 TP、PPPs对3T3-L1前脂肪细胞增殖的影响 | 第34-36页 |
| 3.1.2 ECG对3T3-L1前脂肪细胞分化的影响 | 第36-38页 |
| 3.2 3T3-L1前脂肪细胞诱导分化及油红O染色鉴定 | 第38页 |
| 3.3 地塞米松诱导建立胰岛素抵抗模型 | 第38-40页 |
| 3.4 TP、PPPs对胰岛素抵抗3T3-L1脂肪细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第40-42页 |
| 3.4.1 TP、PPPs对胰岛素抵抗3T3-L1脂肪细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.2 TP、PPPs主要活性成分对胰岛素抵抗3T3-L1脂肪细胞葡萄糖消耗量的影响 | 第41-42页 |
| 3.5 ECG对胰岛素抵抗3T3-L1脂肪细胞相关基因表达的影响 | 第42-47页 |
| 3.5.1 相关基因退火温度的优化 | 第42-43页 |
| 3.5.2 ECG对胰岛素抵抗脂肪细胞相关基因mRNA表达量的影响 | 第43-47页 |
| 3.6 ECG对胰岛素抵抗3T3-L1脂肪细胞相关蛋白表达的影响 | 第47-50页 |
| 第4章 讨论 | 第50-54页 |
| 第5章 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第68页 |
