| 摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-15页 |
| 英文缩略词表 | 第23-25页 |
| 第一部分 2006～2016年河南省肿瘤医院1624例软组织肉瘤住院患者特征分析 | 第25-50页 |
| 1.1 引言 | 第25-26页 |
| 1.2 对象与方法 | 第26-27页 |
| 1.2.1 研究对象 | 第26-27页 |
| 1.2.2 数据处理与统计分析 | 第27页 |
| 1.2.3 质量控制 | 第27页 |
| 1.3 结果 | 第27-45页 |
| 1.3.1 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者一般情况 | 第27-30页 |
| 1.3.2 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者年龄分布 | 第30-35页 |
| 1.3.3 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者性别分布 | 第35-38页 |
| 1.3.4 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者时间分布 | 第38-41页 |
| 1.3.5 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者地区分布 | 第41-44页 |
| 1.3.6 河南省肿瘤医院软组织肉瘤住院患者发病部位 | 第44-45页 |
| 1.4 讨论 | 第45-50页 |
| 第二部分 UPS患者瘤组织与瘤旁组织中NF1/p16~(Ink4a)/PTEN及相关microRNA的表达 | 第50-101页 |
| 2.1 引言 | 第50-55页 |
| 技术路线图 | 第54-55页 |
| 2.2 材料 | 第55-57页 |
| 2.2.1 样本 | 第55页 |
| 2.2.2 主要仪器与试剂 | 第55-57页 |
| 2.3 方法 | 第57-64页 |
| 2.3.1 H&E染色 | 第57-58页 |
| 2.3.2 免疫组化 | 第58-59页 |
| 2.3.3 免疫荧光双染 | 第59-60页 |
| 2.3.4 瘤组织和瘤旁组织中miRNAs测序 | 第60-62页 |
| 2.3.5 qPCR检测miRNAs | 第62-64页 |
| 2.3.6 数据统计分析与处理 | 第64页 |
| 2.4 结果 | 第64-92页 |
| 2.4.1 未分化多形性肉瘤(UPS)患者瘤组织与瘤旁正常肌肉组织中NF1、p16~(Ink4a)、PTEN及其调控信号通路中关键蛋白的表达 | 第64-77页 |
| 2.4.2 UPS患者瘤组织与瘤旁正常组织中microRNAs差异表达谱分析 | 第77-89页 |
| 2.4.3 68例UPS瘤组织与瘤旁正常组织中8个miRNAs表达验证 | 第89-92页 |
| 2.5 讨论 | 第92-101页 |
| 第三部分 NF1/p16~(Ink4a)/PTEN条件性基因敲除小鼠UPS动物模型构建及相关microRNA的表达差异验证 | 第101-129页 |
| 3.1 引言 | 第101-104页 |
| 技术路线图 | 第103-104页 |
| 3.2 材料 | 第104-106页 |
| 3.2.1 小鼠 | 第104页 |
| 3.2.2 主要仪器与试剂 | 第104-106页 |
| 3.3 方法 | 第106-109页 |
| 3.3.1 NF1/p16~(Ink4a)/PTEN条件性基因敲除小鼠时空限制性软组织肉瘤动物模型的构建 | 第106-108页 |
| 3.3.2 H&E染色 | 第108页 |
| 3.3.3 免疫组化 | 第108页 |
| 3.3.4 免疫荧光双染 | 第108-109页 |
| 3.3.5 qPCR检测miRNAs | 第109页 |
| 3.3.6 数据统计分析与处理 | 第109页 |
| 3.4 结果 | 第109-123页 |
| 3.4.1 NF1/p16~(Ink4a)/PTEN条件性基因敲除小鼠时空限制性软组织肉瘤动物模型构建情况 | 第109-111页 |
| 3.4.2 小鼠模型中UPS瘤组织与瘤旁正常肌肉中NF1、p16~(In4a)、PTEN及其调控信号通路中关键蛋白的表达 | 第111-120页 |
| 3.4.3 45例小鼠UPS瘤组织与瘤旁正常组织中8个miRNAs表达验证 | 第120-123页 |
| 3.5 讨论 | 第123-129页 |
| 结论 | 第129-130页 |
| 本研究的创新性、局限性、计划与展望 | 第130-132页 |
| 参考文献 | 第132-139页 |
| 综述 | 第139-160页 |
| 参考文献 | 第153-160页 |
| 个人简历 | 第160-162页 |
| 致谢 | 第162-163页 |
