| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 前言 | 第11-31页 |
| 1.1 热激蛋白概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 热激蛋白的发现 | 第11页 |
| 1.1.2 热激蛋白的分类 | 第11-12页 |
| 1.1.3 热激反应的调节 | 第12页 |
| 1.2 HSP90概述 | 第12-16页 |
| 1.2.1 HSP90的分类 | 第12-13页 |
| 1.2.2 HSP90的结构 | 第13-14页 |
| 1.2.3 HSP90的分布 | 第14页 |
| 1.2.4 HSP90的生物学特性 | 第14页 |
| 1.2.5 HSP90的功能 | 第14-16页 |
| 1.3 核受体概述 | 第16-17页 |
| 1.4 ERR概述 | 第17-19页 |
| 1.4.1 ERR的结构 | 第17-18页 |
| 1.4.2 ERR的分子机制 | 第18页 |
| 1.4.3 ERR的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 拟黑多刺蚁简介 | 第19-21页 |
| 1.5.1 拟黑多刺蚁的生物学特征 | 第20页 |
| 1.5.2 拟黑多刺蚁的饲养 | 第20页 |
| 1.5.3 拟黑多刺蚁的药用价值 | 第20-21页 |
| 1.6 蟋蟀类昆虫概述 | 第21-23页 |
| 1.7 RNA干扰概述 | 第23-26页 |
| 1.7.1 RNAi机制 | 第23-24页 |
| 1.7.2 RNAi在哺乳动物中的应用 | 第24页 |
| 1.7.3 RNAi在昆虫中的研究 | 第24-26页 |
| 1.8 荧光实时定量PCR技术及原位杂交概述 | 第26-28页 |
| 1.8.1 荧光实时定量PCR | 第26-28页 |
| 1.8.2 原位杂交 | 第28页 |
| 1.9 本实验的研究意义 | 第28-31页 |
| 第2章 研究内容和技术路线 | 第31-33页 |
| 2.1 研究内容 | 第31页 |
| 2.2 技术路线 | 第31-33页 |
| 第3章 材料和方法 | 第33-41页 |
| 3.1 材料 | 第33-35页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 3.1.2 仪器和设备 | 第33-34页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第34页 |
| 3.1.4 实验室常用溶液的配方 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.2.1 总RNA的提取 | 第35-36页 |
| 3.2.2 反转录cDNA第一链的合成 | 第36页 |
| 3.3 引物设计及合成 | 第36-37页 |
| 3.4 dsRNA的制备 | 第37-41页 |
| 3.4.1 基因片段的获得 | 第37-38页 |
| 3.4.2 T7启动子的添加 | 第38页 |
| 3.4.3 dsRNA的合成 | 第38-39页 |
| 3.4.4 dsRNA的导入 | 第39-40页 |
| 3.4.5 RNAi的检测 | 第40-41页 |
| 第4章 结果与分析 | 第41-65页 |
| 4.1 拟黑多刺蚁 | 第41-53页 |
| 4.1.1 拟黑多刺蚁总RNA的提取 | 第41页 |
| 4.1.2 dsRNA的合成 | 第41-44页 |
| 4.1.3 dsRNA的饲喂 | 第44页 |
| 4.1.4 拟黑多刺蚁hsp90基因的干扰 | 第44-47页 |
| 4.1.5 hsp90基因被干扰后,EcR和USP基因的表达 | 第47-51页 |
| 4.1.6 hsp90基因拟黑多刺蚁头部的定位 | 第51-52页 |
| 4.1.7 讨论 | 第52-53页 |
| 4.2 黄脸油葫芦ERR基因的干扰 | 第53-65页 |
| 4.2.1 RNA的提取 | 第53页 |
| 4.2.2 dsRNA的合成 | 第53-56页 |
| 4.2.3 黄脸油葫芦的RNAi | 第56-57页 |
| 4.2.4 荧光实时定量PCR的检测 | 第57页 |
| 4.2.5 不同dsRNA的干扰效果 | 第57-59页 |
| 4.2.6 利用ds-Seq1干扰雌虫和雄虫的ERR基因 | 第59-62页 |
| 4.2.7 ERR被干扰后,EcR的表达 | 第62-64页 |
| 4.2.8 讨论 | 第64-65页 |
| 第5章 总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第75页 |