| 摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 中英文缩略对照表 | 第18-20页 |
| 引言 | 第20-23页 |
| 第一部分 MG53蛋白对LPS诱导的HT22细胞损伤的保护作用 | 第23-46页 |
| 前言 | 第23-24页 |
| 1.1 材料与方法 | 第24-33页 |
| 1.1.1 细胞系与细胞培养 | 第24页 |
| 1.1.2 主要仪器与试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.3 细胞培养、传代、冻存、复苏 | 第25-26页 |
| 1.1.4 LPS母液的配制 | 第26页 |
| 1.1.5 HT22细胞损伤模型的建立 | 第26-27页 |
| 1.1.6 CCK-8法检测MG53对LPS诱导HT22增殖的影响 | 第27页 |
| 1.1.7 AnnexinV-FITC/PI染色检测MG53对LPS诱导的HT22细胞凋亡的影响 | 第27页 |
| 1.1.8 流式细胞仪检测MG53对LPS诱导的HT22细胞周期的影响 | 第27页 |
| 1.1.9 划痕实验检测MG53对LPS诱导的HT22细胞迁移的影响 | 第27-28页 |
| 1.1.10 ELISA检测MG53对LPS诱导的HT22细胞SOD活性和MDA含量影响 | 第28页 |
| 1.1.11 Real-timePCR检测TLR4/NF-κB通路及炎症相关因子的表达 | 第28-31页 |
| 1.1.12 细胞总蛋白提取 | 第31页 |
| 1.1.13 WesternBlot检测相关蛋白表达变化 | 第31-33页 |
| 1.1.14 数据处理与统计分析 | 第33页 |
| 1.2 结果 | 第33-43页 |
| 1.2.1 LPS对小鼠海马神经元HT22细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 1.2.2 MG53对LPS诱导的HT22细胞存活率的影响 | 第34-35页 |
| 1.2.3 MG53对LPS诱导HT22细胞凋亡的影响 | 第35-36页 |
| 1.2.4 MG53对LPS诱导HT22细胞周期的影响 | 第36-37页 |
| 1.2.5 MG53对LPS诱导HT22细胞迁移的影响 | 第37-38页 |
| 1.2.6 MG53对LPS诱导HT22细胞内SOD活力和MDA含量的影响 | 第38-39页 |
| 1.2.7 MG53对LPS诱导的TLR4/NF-κB信号通路的影响 | 第39-43页 |
| 1.3 讨论 | 第43-45页 |
| 1.4 小结 | 第45-46页 |
| 第二部分 MG53蛋白联合hUC-MSCs移植对创伤性脑损伤小鼠的治疗作用. | 第46-67页 |
| 前言 | 第46-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第47-54页 |
| 2.1.1 动物来源 | 第47页 |
| 2.1.2 材料试剂 | 第47-48页 |
| 2.1.3 TBI脑损伤动物模型的建立 | 第48-49页 |
| 2.1.4 实验动物分组 | 第49页 |
| 2.1.5 细胞培养 | 第49页 |
| 2.1.6 小鼠脑组织蛋白提取 | 第49页 |
| 2.1.7 小鼠脑组织RNA提取 | 第49-50页 |
| 2.1.8 小鼠死亡率统计和生理体征观察 | 第50页 |
| 2.1.9 小鼠运动功能评分 | 第50页 |
| 2.1.10 小鼠脑含水量检测 | 第50页 |
| 2.1.11 小鼠血清SOD活性和MDA含量检测 | 第50-51页 |
| 2.1.12 小鼠学习记忆能力评估 | 第51-52页 |
| 2.1.13 强迫游泳实验(Forcedswimtest,FST) | 第52页 |
| 2.1.14 糖水偏好实验(Sucrosepreferencetest,SPT) | 第52页 |
| 2.1.15 小鼠脑切片的制备 | 第52-53页 |
| 2.1.16 CV染色检测小鼠脑损伤体积 | 第53页 |
| 2.1.17 体内PI染色 | 第53页 |
| 2.1.18 WesternBlot检测小鼠脑组织中MG53蛋白、凋亡相关蛋白及PI3K/Akt-GSK3β通路相关蛋白的表达 | 第53页 |
| 2.1.19 免疫荧光染色 | 第53-54页 |
| 2.1.20 荧光定量PCR检测BDNF、NGF表达 | 第54页 |
| 2.1.21 数据统计分析 | 第54页 |
| 2.2 结果 | 第54-64页 |
| 2.2.1 术后小鼠一般情况观察 | 第54页 |
| 2.2.2 各组小鼠体重变化和mNSS评分 | 第54-55页 |
| 2.2.3 各组小鼠脑含水量检测 | 第55-56页 |
| 2.2.4 各组小鼠脑组织PI染色和凋亡相关蛋白的表达变化 | 第56-57页 |
| 2.2.5 各组小鼠MAB1281和MG53蛋白的检测 | 第57-58页 |
| 2.2.6 各组小鼠脑组织促生存通路相关蛋白的表达 | 第58-59页 |
| 2.2.7 各组小鼠血清中SOD活性与MDA含量的变化 | 第59-60页 |
| 2.2.8 小鼠的行为学能力检测 | 第60-62页 |
| 2.2.9 各组小鼠脑组织损伤体积变化 | 第62-63页 |
| 2.2.10 各组小鼠脑神经再生情况的变化 | 第63-64页 |
| 2.3 讨论 | 第64-66页 |
| 2.4 小结 | 第66-67页 |
| 全文总结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 综述 质干细胞在创伤性脑损伤治疗中的应用 | 第76-87页 |
| 参考文献 | 第83-87页 |
| 个人简历及硕士期间研究成果 | 第87-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
