| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-37页 |
| 1 组蛋白去乙酰化酶抑制剂曲古抑菌素A(TSA) | 第15-21页 |
| 1.1 组蛋白去乙酰化酶抑制剂的分类 | 第15-16页 |
| 1.2 组蛋白去乙酰化酶抑制剂曲古抑菌素A(TSA)的作用机制 | 第16-17页 |
| 1.3 组蛋白去乙酰化酶抑制剂曲古抑菌素A(TSA)与组蛋白乙酰化修饰及染色质重塑 | 第17-20页 |
| 1.3.1 组蛋白乙酰基转移酶与组蛋白去乙酰化酶 | 第17-18页 |
| 1.3.2 组蛋白乙酰化的作用 | 第18-19页 |
| 1.3.3 TSA与组蛋白乙酰化及染色质重塑 | 第19-20页 |
| 1.4 组蛋白去乙酰化酶抑制剂曲古抑菌素A(TSA)的研究进展 | 第20-21页 |
| 2 DNA甲基转移酶抑制剂5-杂氮脱氧胞苷(5-aza-dc) | 第21-27页 |
| 2.1 DNA甲基转移酶抑制剂的分类 | 第21-22页 |
| 2.2 DNA甲基转移酶抑制剂5-杂氮脱氧胞苷(5-aza-dc)的作用机制 | 第22-23页 |
| 2.3 DNA甲基转移酶抑制剂5-杂氮脱氧胞苷(5-aza-dc)与DNA甲基化 | 第23-26页 |
| 2.3.1 DNA甲基化 | 第23页 |
| 2.3.2 DNA甲基化表观重编程 | 第23-25页 |
| 2.3.3 DNA甲基化与胚胎发育 | 第25页 |
| 2.3.4 5-aza-dc与DNA甲基化重编程 | 第25-26页 |
| 2.4 DNA甲基转移酶抑制剂5-杂氮脱氧胞苷(5-aza-dc)的研究进展 | 第26-27页 |
| 3 哺乳动物孤雄生殖研究进展 | 第27-37页 |
| 3.1 哺乳动物孤雄生殖研究的历史与现状 | 第27-28页 |
| 3.2 哺乳动物孤雄胚胎构建的方法 | 第28-31页 |
| 3.2.1 原核移植法构建孤雄胚 | 第28-29页 |
| 3.2.2 体外受精法构建孤雄胚 | 第29-30页 |
| 3.2.3 单精注射法构建孤雄胚 | 第30-31页 |
| 3.2.4 体外受精结合原核移植法构建孤雄胚 | 第31页 |
| 3.3 哺乳动物孤雄胚胎发育的瓶颈 | 第31-35页 |
| 3.3.1 母源基因组在胚胎发育中是必不可少的 | 第31-32页 |
| 3.3.2 基因印记 | 第32-33页 |
| 3.3.3 X染色体失活 | 第33-35页 |
| 3.4 哺乳动物孤雄胚的应用前景 | 第35-37页 |
| 3.4.1 在基础研究中的应用 | 第35页 |
| 3.4.2 在医学领域中的应用 | 第35-36页 |
| 3.4.3 在畜牧业中的应用 | 第36-37页 |
| 第二章 TSA对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第37-51页 |
| 1 前言 | 第37-38页 |
| 2 试验材料与方法 | 第38-44页 |
| 2.1 试验材料 | 第38-41页 |
| 2.1.1 试验主要药品与试剂 | 第38-39页 |
| 2.1.2 试验主要仪器设备 | 第39页 |
| 2.1.3 试验操作液 | 第39-40页 |
| 2.1.4 显微操作针的准备 | 第40-41页 |
| 2.2 试验方法 | 第41-44页 |
| 2.2.1 试验设计 | 第41-42页 |
| 2.2.2 卵巢的采集与保存 | 第42页 |
| 2.2.3 卵母细胞的收集 | 第42-43页 |
| 2.2.4 卵母细胞的体外成熟培养 | 第43页 |
| 2.2.5 卵母细胞的准备 | 第43页 |
| 2.2.6 精子的处理与准备 | 第43页 |
| 2.2.7 卵母细胞的去核 | 第43页 |
| 2.2.8 孤雄胚的构建 | 第43-44页 |
| 2.2.9 孤雄胚的激活处理及体外培养 | 第44页 |
| 3 数据统计 | 第44页 |
| 4 结果与分析 | 第44-46页 |
| 4.1 TSA浓度对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第44-45页 |
| 4.2 TSA作用时间对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第45-46页 |
| 4.3 TSA处理阶段对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第46页 |
| 5 讨论 | 第46-50页 |
| 5.1 TSA浓度对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第47-48页 |
| 5.2 TSA作用时间对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第48-49页 |
| 5.3 TSA处理阶段对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第49-50页 |
| 6 结论 | 第50-51页 |
| 第三章 5-aza-dc对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第51-58页 |
| 1 前言 | 第51-52页 |
| 2 试验材料与方法 | 第52-53页 |
| 2.1 试验材料 | 第52页 |
| 2.1.1 试验主要药品与试剂 | 第52页 |
| 2.1.2 试验主要仪器设备 | 第52页 |
| 2.1.3 试验操作液 | 第52页 |
| 2.1.4 显微操作针的准备 | 第52页 |
| 2.2 试验方法 | 第52-53页 |
| 2.2.1 试验设计 | 第52-53页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第53页 |
| 3 数据统计 | 第53页 |
| 4 结果与分析 | 第53-55页 |
| 4.1 5-aza-dc浓度对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第53-54页 |
| 4.2 5-aza-dc作用时间对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第54-55页 |
| 5 讨论 | 第55-57页 |
| 5.1 5-aza-dc浓度对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第55-56页 |
| 5.2 5-aza-dc作用时间对早期牛孤雄胚体外发育的作用 | 第56-57页 |
| 6 结论 | 第57-58页 |
| 第四章 TSA对组蛋白乙酰化水平及表观修饰相关基因表达的影响 | 第58-72页 |
| 1 前言 | 第58-59页 |
| 2 试验材料与方法 | 第59-64页 |
| 2.1 试验材料 | 第59-60页 |
| 2.1.1 试验主要药品与试剂 | 第59页 |
| 2.1.2 试验主要仪器设备 | 第59页 |
| 2.1.3 试验操作液 | 第59-60页 |
| 2.2 试验方法 | 第60-64页 |
| 2.2.1 试验设计 | 第60页 |
| 2.2.2 卵母细胞的孤雌激活 | 第60页 |
| 2.2.3 免疫荧光染色 | 第60-61页 |
| 2.2.4 荧光定量PCR | 第61-64页 |
| 3 数据统计 | 第64页 |
| 4 结果与分析 | 第64-70页 |
| 4.1 TSA对牛孤雄胚组蛋白乙酰化水平的影响 | 第64页 |
| 4.2 TSA对牛孤雄胚表观修饰相关基因表达的影响 | 第64-70页 |
| 5 讨论 | 第70-71页 |
| 5.1 TSA对牛孤雄胚组蛋白乙酰化水平的影响 | 第70页 |
| 5.2 TSA对牛孤雄胚表观修饰相关基因表达的影响 | 第70-71页 |
| 6 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-86页 |
| 附表 | 第86-87页 |
| 附图 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
