| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 前言 | 第10-27页 |
| 1.1 引言研究背景 | 第10-12页 |
| 1.2 酪蛋白糖巨肽(Casein Glycomacropeptide, CGMP)概述 | 第12-19页 |
| 1.2.1 酪蛋白来源生物活性肽 | 第13-17页 |
| 1.2.2 CGMP的分离和制备方法 | 第17页 |
| 1.2.3 CGMP的生物学特性和生理功能 | 第17-19页 |
| 1.3 DCs概述 | 第19-23页 |
| 1.3.1 DCs简介 | 第19页 |
| 1.3.2 DCs的分化与发育 | 第19-20页 |
| 1.3.3 DCs的先天免疫控制及其抗原提呈 | 第20-21页 |
| 1.3.4 DCs激活的信号通路及规律 | 第21-22页 |
| 1.3.5 DCs的其他作用— DCs和老化的关系 | 第22-23页 |
| 1.4 肠粘膜免疫系统 | 第23-25页 |
| 1.4.1 肠粘膜系统的结构与功能 | 第23-25页 |
| 1.4.2 肠粘膜在先天免疫和获得性免疫中的关键作用 | 第25页 |
| 1.5 开展本课题的依据和意义 | 第25-27页 |
| 第二章 材料和方法 | 第27-43页 |
| 2.1 不同浓度CGMP采用不同途径对小鼠外周血细胞因子的作用 | 第27-33页 |
| 2.1.1 材料 | 第27页 |
| 2.1.2 实验动物、仪器 | 第27页 |
| 2.1.3 动物分组、给药和取血 | 第27-28页 |
| 2.1.4 检测细胞因子的方法 | 第28-29页 |
| 2.1.5 液体芯片悬浮仪检测小鼠细胞因子 | 第29-33页 |
| 2.1.6 数据处理分析方法 | 第33页 |
| 2.2 DCs的培养 | 第33-35页 |
| 2.2.1 材料、试剂与实验动物 | 第33页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第33页 |
| 2.2.3 实验步骤 | 第33-35页 |
| 2.2.3.1 培养DCs所需试剂的准备 | 第33-34页 |
| 2.2.3.2 不同浓度CGMP作为刺激物培养DCs | 第34-35页 |
| 2.3 DCs的流式分析鉴定 | 第35-36页 |
| 2.3.1 材料 | 第35页 |
| 2.3.2 仪器 | 第35页 |
| 2.3.3 方法 | 第35-36页 |
| 2.4 同型混合淋巴细胞反应 | 第36-37页 |
| 2.4.1 材料 | 第36-37页 |
| 2.4.2 实验动物 | 第37页 |
| 2.4.3 仪器 | 第37页 |
| 2.4.4 方法 | 第37页 |
| 2.5 不同浓度CGMP刺激DCs分泌细胞因子的检测 | 第37-39页 |
| 2.5.1 材料 | 第37-38页 |
| 2.5.2 仪器 | 第38页 |
| 2.5.3 方法 | 第38-39页 |
| 2.5.4 结果处理分析方法 | 第39页 |
| 2.6 24种细胞因子数据处理 | 第39-43页 |
| 第三章 结果与分析 | 第43-74页 |
| 3.1 不同浓度CGMP不同途径对小鼠外周血细胞因子的作用 | 第43-62页 |
| 3.1.1 口服CGMP后细胞因子的变化情况 | 第51-56页 |
| 3.1.2 腹腔注射CGMP后细胞因子的变化情况 | 第56-62页 |
| 3.2 DCs的流式鉴定结果分析 | 第62-67页 |
| 3.3 同型混合淋巴细胞反应 | 第67-68页 |
| 3.4 CGMP刺激后培养上清液中细胞因子的变化 | 第68-74页 |
| 第四章 结论 | 第74-77页 |
| 4.1 CGMP对血清和培养上清液中的细胞因子和细胞通讯网络的作用 | 第74-75页 |
| 4.2 CGMP对DCs和混合淋巴细胞反应的作用 | 第75-76页 |
| 4.3 创新点 | 第76页 |
| 4.4 尚存在的问题及进一步设想 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-82页 |
| 论文、参加科研情况说明 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
