| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-12页 |
| Abstract | 第12-17页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 文献回顾 | 第19-33页 |
| 实验一 电针改善脑缺血后小鼠神经行为学的基础研究 | 第33-41页 |
| 1 材料 | 第33-34页 |
| 1.1 实验动物 | 第33页 |
| 1.2 主要使用的器材 | 第33页 |
| 1.3 手术器械 | 第33-34页 |
| 1.4 主要试剂 | 第34页 |
| 2 方法 | 第34-37页 |
| 2.1 实验分组 | 第34页 |
| 2.2 小鼠全脑缺血模型的构建 | 第34-35页 |
| 2.3 电针治疗 | 第35页 |
| 2.4 神经功能学评分 | 第35-36页 |
| 2.5 通过 Morris 水迷宫的方法鉴定四组小鼠神经行为学表现 | 第36页 |
| 2.6 统计分析 | 第36-37页 |
| 3.结果 | 第37-40页 |
| 3.1 脑血流监测结果 | 第37页 |
| 3.2 各组小鼠神经行为学评分 | 第37-38页 |
| 3.3 各组小鼠的水迷宫测试结果 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-41页 |
| 实验二 电针抑制全脑缺血后小鼠神经元凋亡和促进神经发生 | 第41-48页 |
| 1 材料 | 第41-42页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 主要使用的器材 | 第41页 |
| 1.3 主要试剂 | 第41-42页 |
| 2 方法 | 第42-43页 |
| 2.1 实验分组 | 第42页 |
| 2.2 电针治疗 | 第42页 |
| 2.3 神经发生 | 第42-43页 |
| 2.4 TUNEL 染色 | 第43页 |
| 2.5 尼氏染色 | 第43页 |
| 2.6 统计 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-47页 |
| 3.1 神经发生 | 第43-44页 |
| 3.2 TUNEL 染色结果 | 第44-46页 |
| 3.3 尼氏染色的结果 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| 实验三 电针促进神经前体基因 Neurog2 的表达 | 第48-54页 |
| 1 材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 主要使用的器材 | 第48页 |
| 1.3 主要试剂 | 第48-49页 |
| 2 方法 | 第49-51页 |
| 2.1 实验分组，小鼠全脑缺血模型和电针治疗方法 | 第49页 |
| 2.2 动物取材 | 第49页 |
| 2.3 PCR 检测 | 第49-50页 |
| 2.4.免疫荧光染色 | 第50页 |
| 2.5 统计学处理 | 第50-51页 |
| 3 PCR 结果 | 第51-52页 |
| 3.1 Neurog2 在成年小鼠全脑缺血再灌注损伤后的表达情况 | 第51页 |
| 3.2 电针治疗后 Neurog2 的表达变化 | 第51-52页 |
| 3.3 免疫荧光结果 | 第52页 |
| 4.讨论 | 第52-54页 |
| 实验四 Neurog2 改善脑缺血小鼠的神经行为学以及促进神经发生 | 第54-59页 |
| 1 材料 | 第54页 |
| 1.1 实验动物 | 第54页 |
| 1.2 主要使用的器材 | 第54页 |
| 1.3 主要试剂 | 第54页 |
| 2 方法 | 第54-56页 |
| 2.1 实验分组 | 第54-55页 |
| 2.2 侧脑室注射 | 第55页 |
| 2.3 Brdu 注射途径和剂量 | 第55页 |
| 2.4 观察指标 | 第55-56页 |
| 2.5 统计方法 | 第56页 |
| 3.结果 | 第56-58页 |
| 3.1 各组小鼠神经行为学评分 | 第56-57页 |
| 3.2 免疫荧光的结果 | 第57-58页 |
| 4 讨论 | 第58-59页 |
| 小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 个人简历和研究成果 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
