| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 主要缩略词表 | 第10-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-18页 |
| 1.1 水稻籽粒灌浆及其灌浆物质 | 第12-13页 |
| 1.2 高等植物蔗糖转运蛋白的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.2.1 蔗糖转运蛋白的发现与分类 | 第13页 |
| 1.2.2 蔗糖转运蛋白的结构与功能 | 第13-15页 |
| 1.2.3 蔗糖转运蛋白的调控 | 第15-16页 |
| 1.3 水稻蔗糖转运蛋白的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 研究的目的意义 | 第17-18页 |
| 2 农杆菌介导OsSUT1基因转化水稻 | 第18-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 水稻愈伤组织的获得 | 第19-20页 |
| 2.2.2 工程菌的制备 | 第20页 |
| 2.2.3 根癌农杆菌介导转化水稻愈伤 | 第20页 |
| 2.2.4 植株再生 | 第20-21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-23页 |
| 2.3.1 水稻抗性愈伤的获得 | 第21-22页 |
| 2.3.2 水稻再生植株的获得 | 第22页 |
| 2.3.3 再生植株种子的收获 | 第22-23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-25页 |
| 2.4.1 水稻转基因操作过程中的几个关键问题 | 第23-24页 |
| 2.4.2 再生植株的结实问题 | 第24页 |
| 2.4.3 转基因T_0代植株检测与收种方法 | 第24页 |
| 2.4.4 双元表达载体与无筛选标记植株 | 第24-25页 |
| 3 转OsSUT1基因水稻的分子检测与表达分析 | 第25-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第25页 |
| 3.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 3.2.1 水稻基因组DNA提取 | 第25-26页 |
| 3.2.2 转基因植株PCR检测 | 第26页 |
| 3.2.3 转基因植株Southern Blot检测 | 第26-28页 |
| 3.2.4 转基因植株RT-PCR检测 | 第28-29页 |
| 3.2.5 转基因株系OsSUT1基因表达量分析 | 第29-30页 |
| 3.3 结果与分析 | 第30-36页 |
| 3.3.1 转基因植株PCR检测结果与遗传分析 | 第30-31页 |
| 3.3.2 转基因植株Southern Blot检测结果 | 第31页 |
| 3.3.3 转基因植株的RT-PCR检测 | 第31-32页 |
| 3.3.4 OsSUT1基因表达量分析 | 第32-36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| 3.4.1 转基因植株的遗传分析 | 第36页 |
| 3.4.2 Southern检测和RT-PCR检测的重要性 | 第36页 |
| 3.4.3 P_(SAG12)的启动子活性与利用 | 第36-38页 |
| 4 过表达OsSUT1对水稻碳水化合物及粒重的影响 | 第38-49页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 4.2.1 材料种植 | 第38页 |
| 4.2.2 转基因植株光合速率测定 | 第38-39页 |
| 4.2.3 转基因植株总可溶性糖含量检测 | 第39页 |
| 4.2.4 转基因植株蔗糖含量检测 | 第39-40页 |
| 4.2.5 结实特性考察方法 | 第40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-46页 |
| 4.3.1 光合速率分析 | 第40-41页 |
| 4.3.2 总可溶性糖含量分析 | 第41-43页 |
| 4.3.3 蔗糖含量分析 | 第43-46页 |
| 4.3.4 结实特性考察 | 第46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-49页 |
| 4.4.1 OsSUT1的表达与调控 | 第46-47页 |
| 4.4.2 过表达OsSUT1对水稻光合及碳水化合物的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.3 过表达OsSUT1基因对产量性状的影响 | 第48-49页 |
| 5 全文总结 | 第49-52页 |
| 5.1 本研究结论 | 第49页 |
| 5.2 讨论 | 第49-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
