摘要 | 第12-14页 |
ABSTRACT | 第14-15页 |
缩略词 | 第16-17页 |
第一章 文献综述 | 第17-28页 |
1.1 果树连作障碍成因 | 第17-20页 |
1.1.1 非生物因素 | 第17-18页 |
1.1.2 生物因素 | 第18-19页 |
1.1.3 非生物因素与生物因素的互作 | 第19-20页 |
1.2 果树连作障碍调控措施 | 第20-23页 |
1.2.1 农艺措施 | 第20-22页 |
1.2.2 筛选抗性品种和砧木 | 第22页 |
1.2.3 生物防治 | 第22-23页 |
1.3 植物化感作用 | 第23-24页 |
1.3.1 化感作用基本特征 | 第23页 |
1.3.2 化感物质来源 | 第23-24页 |
1.3.3 化感物质种类 | 第24页 |
1.4 酚酸类化感物质作用机制 | 第24-27页 |
1.4.1 酚酸类物质对植物的直接作用 | 第25页 |
1.4.2 酚酸类物质对植物的间接作用 | 第25-27页 |
1.5 本研究目的和意义 | 第27-28页 |
第二章 外源酚酸对贝达葡萄植株的影响 | 第28-42页 |
2.1 材料与方法 | 第28-30页 |
2.1.1 试验材料 | 第28页 |
2.1.2 试验设计 | 第28-29页 |
2.1.3 贝达葡萄生长指标的测定 | 第29-30页 |
2.1.4 根系分泌物的收集 | 第30页 |
2.1.5 酚酸物质的富集 | 第30页 |
2.1.6 酚酸物质的色谱分析 | 第30页 |
2.1.7 数据分析 | 第30页 |
2.2 结果与分析 | 第30-39页 |
2.2.1 对羟基苯甲酸对葡萄植株生长的影响 | 第30-34页 |
2.2.2 水杨酸对贝达葡萄植株生长的影响 | 第34-38页 |
2.2.3 对羟基苯甲酸对贝达葡萄根系分泌酚酸的影响 | 第38页 |
2.2.4 水杨酸对贝达葡萄根系分泌酚酸的影响 | 第38-39页 |
2.2.5 外源酚酸对贝达葡萄根系分泌酚酸的影响 | 第39页 |
2.3 讨论 | 第39-41页 |
2.3.1 酚酸对植株的浓度效应 | 第39页 |
2.3.2 酚酸对植株的作用阈值 | 第39-40页 |
2.3.3 外源酚酸处理对根系分泌酚酸类物质的影响 | 第40-41页 |
2.4 小结 | 第41-42页 |
第三章 外源酚酸在土壤中的累积与转化 | 第42-55页 |
3.1 材料与方法 | 第42-45页 |
3.1.1 试验材料 | 第42页 |
3.1.2 试验设计 | 第42-43页 |
3.1.3 土壤浸提液的制备 | 第43-44页 |
3.1.4 土壤中自毒物质的色谱分析 | 第44页 |
3.1.5 数据分析 | 第44-45页 |
3.2 结果与分析 | 第45-52页 |
3.2.1 对羟基苯甲酸在土壤中吸附动态(室内培养) | 第45页 |
3.2.2 盆栽条件下对羟基苯甲酸在土壤中滞留特性 | 第45-46页 |
3.2.3 水杨酸在土壤中吸附动态(室内培养) | 第46-47页 |
3.2.4 盆栽条件下水杨酸在土壤中滞留特性 | 第47-48页 |
3.2.5 对羟基苯甲酸在土壤中的转化 | 第48-52页 |
3.3 讨论 | 第52-53页 |
3.3.1 微生物对土壤中酚酸含量的影响 | 第52页 |
3.3.2 根系分泌物对土壤中酚酸含量影响 | 第52-53页 |
3.3.3 自毒物质在土壤中的生物转化 | 第53页 |
3.4 小结 | 第53-55页 |
第四章 外源酚酸对土壤微生物群落结构和功能多样性的影响 | 第55-68页 |
4.1 材料与方法 | 第55-57页 |
4.1.1 试验材料 | 第55页 |
4.1.2 试验设计 | 第55页 |
4.1.3 土壤细菌群落功能多样性BIOLOG分析 | 第55页 |
4.1.4 土壤DNA的提取 | 第55页 |
4.1.5 土壤细菌16S rRNA基因的扩增 | 第55-56页 |
4.1.6 土壤真菌ITS rDNA的扩增 | 第56页 |
4.1.7 变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第56页 |
4.1.8 数据分析 | 第56-57页 |
4.2 结果与分析 | 第57-66页 |
4.2.1 土壤细菌群落功能多样性的分析 | 第57-61页 |
4.2.2 土壤微生物群落结构的分析 | 第61-66页 |
4.3 讨论 | 第66-67页 |
4.3.1 酚酸对土壤微生物群落的影响 | 第66页 |
4.3.2 根系分泌物对土壤微生物的影响 | 第66-67页 |
4.4 小结 | 第67-68页 |
第五章 新一代高通量测序技术研究对羟基苯甲酸对贝达葡萄根际土壤微生物群落结构的影响 | 第68-79页 |
5.1 材料与方法 | 第68-71页 |
5.1.1 试验材料 | 第68页 |
5.1.2 SIP试验设计 | 第68-69页 |
5.1.3 土壤DNA的提取 | 第69-70页 |
5.1.4 超高速密度梯度离心 | 第70页 |
5.1.5 MiSeq测序实验流程 | 第70页 |
5.1.6 数据分析 | 第70-71页 |
5.2 结果与分析 | 第71-76页 |
5.2.1 土壤样品测序结果检验 | 第71-72页 |
5.2.2 土壤样品高通量测序分类总结 | 第72-73页 |
5.2.3 不同浓度对羟基苯甲酸处理对土壤微生物多样性的影响 | 第73-74页 |
5.2.4 不同密度梯度分层中各微生物类型相对丰度 | 第74-76页 |
5.3 讨论 | 第76-78页 |
5.3.1 参与对羟基苯甲酸在土壤中转化的微生物作用者 | 第76-77页 |
5.3.2 微生物对土壤N循环的影响 | 第77-78页 |
5.4 小结 | 第78-79页 |
第六章 外源酚酸介导下贝达葡萄根际土壤优势真菌的分离与鉴定 | 第79-87页 |
6.1 材料与方法 | 第79-81页 |
6.1.1 试验材料 | 第79页 |
6.1.2 试验设计 | 第79-80页 |
6.1.3 土壤优势真菌的分离 | 第80页 |
6.1.4 种子液的制备 | 第80页 |
6.1.5 代谢体系建立 | 第80页 |
6.1.6 代谢能力的测定 | 第80页 |
6.1.7 真菌鉴定 | 第80-81页 |
6.1.8 数据分析 | 第81页 |
6.2 结果与分析 | 第81-85页 |
6.2.1 对羟基苯甲酸介导的土壤优势微生物的分离 | 第81页 |
6.2.2 水杨酸介导的土壤优势微生物的分离 | 第81页 |
6.2.3 以酚酸为碳源真菌筛选 | 第81-82页 |
6.2.4 不同优势真菌对对羟基苯甲酸的代谢效率的比较 | 第82-83页 |
6.2.5 不同优势真菌对水杨酸的代谢效率的比较 | 第83页 |
6.2.6 ITS rDNA序列分析 | 第83页 |
6.2.7 FA4-1对贝达葡萄植株生长的影响 | 第83-85页 |
6.3 讨论 | 第85-86页 |
6.3.1 以酚酸为碳源的优势微生物 | 第85页 |
6.3.2 土壤微生物对植株生长的影响 | 第85-86页 |
6.4 小结 | 第86-87页 |
第七章 全文结论与创新点 | 第87-88页 |
7.1 结论 | 第87页 |
7.2 本课题特点与创新之处 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-104页 |
致谢 | 第104-105页 |
攻读博士期间发表的论文 | 第105页 |