| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 胰岛素抵抗的简介 | 第11页 |
| 1.2 马齿苋的概述 | 第11-12页 |
| 1.3 HepG2细胞胰岛素抵抗细胞模型在生物活性评价中的研究进展 | 第12-17页 |
| 1.3.1 HepG2细胞的体外培养 | 第13页 |
| 1.3.2 HepG2-IR模型的建立 | 第13-14页 |
| 1.3.3 天然活性成分改善HepG2细胞胰岛素抵抗 | 第14-15页 |
| 1.3.4 天然活性成分改善HepG2细胞胰岛素抵抗的作用机制 | 第15-17页 |
| 1.4 本课题的研究内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究意义 | 第18-19页 |
| 第2章 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立方法的比较研究 | 第19-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.3 试剂的配制 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 HepG2细胞的培养 | 第23-24页 |
| 2.2.2 HepG2细胞分组 | 第24页 |
| 2.2.3 诱导物对HepG2细胞增殖能力的影响研究 | 第24-26页 |
| 2.2.4 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的诱导及评价 | 第26-29页 |
| 2.2.5 统计分析 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-42页 |
| 2.3.1 诱导物对HepG2细胞增殖能力的影响 | 第30-37页 |
| 2.3.2 形态学观察 | 第37-38页 |
| 2.3.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的评价 | 第38-42页 |
| 2.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第3章 马齿苋多糖改善HepG2细胞胰岛素抵抗的研究 | 第43-52页 |
| 3.1 实验材料 | 第43-45页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3.1.3 试剂的配制 | 第45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 3.2.1 马齿苋多糖的提取 | 第45页 |
| 3.2.2 细胞分组 | 第45-46页 |
| 3.2.3 马齿苋多糖对HepG2细胞增殖能力的影响研究 | 第46页 |
| 3.2.4 马齿苋多糖对HepG2细胞胰岛素抵抗模型的改善作用 | 第46页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-51页 |
| 3.3.1 马齿苋多糖对HepG2细胞增殖能力的影响 | 第46-48页 |
| 3.3.2 形态学观察 | 第48-49页 |
| 3.3.3 马齿苋多糖对HepG2细胞葡萄糖吸收的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.4 马齿苋多糖对HepG2细胞甘油三脂含量的影响 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第4章 马齿苋多糖改善HepG2细胞胰岛素抵抗的机制研究 | 第52-72页 |
| 4.1 实验材料 | 第52-56页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第52-54页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第54页 |
| 4.1.3 试剂的配制 | 第54-56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-62页 |
| 4.2.1 蛋白质印迹法(Western Blot) | 第56-60页 |
| 4.2.2 逆转录聚合酶链式反应 | 第60-62页 |
| 4.2.3 统计分析 | 第62页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第62-71页 |
| 4.3.1 Western Blot检测HepG2细胞胰岛素抵抗信号转导通路相关基因的蛋白表达水平 | 第62-69页 |
| 4.3.2 RT-PCR检测HepG2细胞胰岛素抵抗信号转导通路相关基因转录水平表达的影响 | 第69-71页 |
| 4.4 本章小结 | 第71-72页 |
| 第5章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 5.1 结论 | 第72页 |
| 5.2 展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 附录 缩写词对照表 | 第80-81页 |
| 攻读硕士研究生学位研究成果及所获荣誉 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
