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芋螺毒素LvD21镇痛作用及其作用靶点的研究

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一部分 文献综述第8-31页
    1 芋螺及芋螺毒素研究进展第8-19页
        1.1 芋螺生物学特性第8-9页
        1.2 芋螺毒素的分类和命名第9-10页
        1.3 芋螺毒素的药理学活性第10-19页
            1.3.1 作用于配体门控离子通道的芋螺毒素第11-13页
            1.3.2 作用于电压门控离子通道的芋螺毒素第13-19页
    2 疼痛第19-27页
        2.1 疼痛概述第19页
        2.2 大鼠疼痛模型研究进展第19-27页
            2.2.1 物理刺激法第19-21页
            2.2.2 化学刺激法第21-23页
            2.2.3 神经病理性痛模型第23-27页
    3 前景和应用第27-29页
    4 本研究的目的意义第29-30页
    5 技术路线第30-31页
第二部分 动物实验第31-52页
    1 实验材料第31-32页
        1.1 实验动物第31页
        1.2 药品与试剂第31-32页
        1.3 仪器设备第32页
    2 实验方法第32-37页
        2.1 给药途径第32-33页
            2.1.1 腹腔给药法第32页
            2.1.2 侧脑室给药法第32页
            2.1.3 金鱼肌肉给药法第32-33页
            2.1.4 大鼠鞘内给药方法第33页
        2.2 芋螺毒素活性药物筛选第33-34页
            2.2.1 金鱼肌肉注射给药行为学筛选第33页
            2.2.2 幼鼠行为学筛选第33-34页
        2.3 镇痛药筛选方法第34-36页
            2.3.1 热板法第34页
            2.3.2 甩尾法第34-35页
            2.3.3 大鼠CCI模型的建立与机械痛觉刺激实验第35-36页
        2.4 统计方法第36-37页
    3 动物实验结果第37-52页
        3.1 金鱼、幼鼠行为学初筛第37-39页
            3.1.1 幼鼠中枢给药行为学的初筛结果第37-38页
            3.1.2 金鱼肌肉注射给药行为学的初筛结果第38-39页
        3.2 LvD21镇痛作用研究第39-52页
            3.2.1 侧脑室给药LvD21的镇痛效果第39-43页
            3.2.2 腹腔给药LvD21的镇痛效果第43-47页
            3.2.3 LvD21在大鼠CCI模型上的镇痛作用第47-52页
第三部分 电生理实验部分第52-61页
    1 材料第52-53页
        1.1 菌种、质粒及培养基第52页
        1.2 实验动物第52页
        1.3 试剂与仪器第52-53页
    2 方法第53-57页
        2.1 CaCl2法制备E.coli DH5α感受态细胞第53页
        2.2 重组质粒转化入工程菌第53-54页
        2.3 使用BBI质粒中量提取试剂盒提取质粒第54页
        2.4 α3、β2乙酰胆碱受体基因质粒的线性化第54-55页
        2.5 α3、β2乙酰胆碱受体线性化DNA的体外转录第55页
        2.6 纯化α 3、β2乙酰胆碱受体的cRNA第55-56页
        2.7 分离爪蟾卵母细胞第56页
        2.8 显微注射受体cRNA第56-57页
        2.9 记录nAChRs门控电流第57页
    3 电生理实验结果第57-61页
        3.1 含有α3、β2 nAChR基因的质粒提取第57-58页
        3.2 α3、β2质粒的酶切线性化第58-59页
        3.3 α3、β2乙酰胆碱受体cRNA的制备、纯化和浓度测定第59页
        3.4 LvD21对α3 β2乙酰胆碱受体的作用第59-61页
第四部分 讨论第61-65页
    1 动物疼痛模型第61-63页
    2 电生理实验第63-65页
第五部分 结论第65-66页
参考文献第66-70页
致谢第70-71页
作者在读期间科研成果简介第71页

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