摘 要 | 第2-3页 |
ABSTRACT | 第3页 |
第一章 绪论 | 第6-22页 |
第一节 微生物学及其危害 | 第6-9页 |
1.1 微生物学基础 | 第6-7页 |
1.2 环境因素对微生物的影响 | 第7-8页 |
1.3 微生物的危害 | 第8-9页 |
第二节 抗菌材料的研究现状 | 第9-11页 |
2.1 抗菌塑料 | 第9页 |
2.2 抗菌涂料 | 第9-10页 |
2.3 抗菌陶瓷 | 第10页 |
2.4 抗菌纺织品 | 第10-11页 |
第三节 抗菌剂 | 第11-15页 |
3.1 有机抗菌剂 | 第12-14页 |
3.1.1 化学合成有机抗菌剂 | 第12-14页 |
3.1.2 天然抗菌剂 | 第14页 |
3.2 无机类抗菌剂 | 第14-15页 |
第四节 壳聚糖及其衍生物抗菌剂的研究现状 | 第15-20页 |
4.1 甲壳素及壳聚糖概述 | 第15-17页 |
4.2 壳聚糖衍生物 | 第17-19页 |
4.3 壳聚糖抗菌机理简述 | 第19-20页 |
第五节 论文研究工作内容 | 第20-22页 |
第二章 水溶性壳聚糖衍生物的制备与性能研究 | 第22-39页 |
第一节 合成与结构分析 | 第22-33页 |
1.1 实验原料及仪器 | 第22页 |
1.2 壳聚糖衍生物的制备 | 第22-25页 |
1.3 结构测定 | 第25-26页 |
1.3.1 红外光谱测试 | 第25页 |
1.3.2 磺化壳聚糖硫含量的测试 | 第25-26页 |
1.3.3 羧甲基化度的测定 | 第26页 |
1.4 结果与讨论 | 第26-33页 |
1.4.1 结构分析 | 第26-30页 |
1.4.2 正交实验分析 | 第30-33页 |
第二节 壳聚糖衍生物的性能研究 | 第33-39页 |
2.1 原料与仪器 | 第33页 |
2.2 实验过程 | 第33-34页 |
2.2.1 抗菌性测试 | 第33-34页 |
2.2.2 溶解性能测试 | 第34页 |
2.2.3 差示扫描量热分析 | 第34页 |
2.3 结果与讨论 | 第34-39页 |
2.3.1 抗菌性能研究 | 第34-36页 |
2.3.2 溶解性能 | 第36页 |
2.3.3 差示扫描量热分析 | 第36-39页 |
第三章 抗菌机理研究 | 第39-68页 |
第一节 引言 | 第39页 |
第二节 壳聚糖及衍生物对质粒DNA的作用 | 第39-52页 |
2.1 主要原料 | 第39-40页 |
2.2 实验仪器 | 第40页 |
2.3 实验方法 | 第40-43页 |
2.3.1 实验用培养基及缓冲液的配制 | 第40-41页 |
2.3.2 活体水平测试用质粒的提取 | 第41-42页 |
2.3.3 离体水平实验 | 第42页 |
2.3.4 琼脂糖凝胶电泳 | 第42-43页 |
2.3.5 紫外吸收光谱研究 | 第43页 |
2.3.6 拉曼光谱研究 | 第43页 |
2.4 结果与讨论 | 第43-51页 |
2.4.1 壳聚糖及衍生物与DNA作用的紫外吸收光谱研究 | 第43-44页 |
2.4.2 拉曼光谱研究 | 第44-45页 |
2.4.3 壳聚糖及衍生物与DNA作用的琼脂糖凝胶电泳分析 | 第45-51页 |
2.5 小结 | 第51-52页 |
第三节 壳聚糖及衍生物对基因表达的影响 | 第52-68页 |
3.1 主要原料 | 第52页 |
3.2 实验仪器 | 第52页 |
3.3 实验方法 | 第52-56页 |
3.3.1 实验所用缓冲液、液体培养基的配制 | 第52-54页 |
3.3.2 细胞破碎与酶液收集 | 第54页 |
3.3.3 牛血清蛋白标准曲线的绘制 | 第54-55页 |
3.3.4 蛋白质浓度的测定 | 第55页 |
3.3.5 蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第55页 |
3.3.6 酶活力的测定方法 | 第55页 |
3.3.7 萘降解基因的表达 | 第55-56页 |
3.4 结果与讨论 | 第56-67页 |
3.4.1 活体水平 | 第56-63页 |
3.4.2 离体水平 | 第63-66页 |
3.4.3 对降解基因表达的影响 | 第66-67页 |
3.5 小结 | 第67-68页 |
第四章 总论 | 第68-70页 |
1.1 本文工作总结 | 第68页 |
1.2 下步工作的方向 | 第68-70页 |
参考文献 | 第70-72页 |
附录 | 第72-84页 |