| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 主要英文缩略词索引 | 第14-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-23页 |
| 1.1 硫化氢的生成代谢和功能 | 第15-16页 |
| 1.2 H_2S具有调节脂质代谢的作用 | 第16页 |
| 1.3 PCSK9的功能 | 第16-17页 |
| 1.4 PCSK9的调控 | 第17-19页 |
| 1.5 SREBPs与脂质代谢 | 第19-20页 |
| 1.6 PI3K/Akt与脂质代谢 | 第20-23页 |
| 第2章 实验材料 | 第23-25页 |
| 2.1 细胞和主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 第3章 实验方法 | 第25-33页 |
| 3.1 细胞培养 | 第25-27页 |
| 3.1.1 细胞复苏 | 第25页 |
| 3.1.2 细胞传代 | 第25页 |
| 3.1.3 细胞换液 | 第25页 |
| 3.1.4 细胞冻存 | 第25-26页 |
| 3.1.5 实验分组 | 第26-27页 |
| 3.2 常用液体的配制 | 第27-28页 |
| 3.3 油红O染色 | 第28页 |
| 3.4 细胞膜红色荧光标记探针LDL | 第28页 |
| 3.5 细胞免疫荧光 | 第28-29页 |
| 3.6 Western blot | 第29-31页 |
| 3.6.1 贴壁细胞蛋白质提取 | 第29页 |
| 3.6.2 SDS-PAGE凝胶配制 | 第29-30页 |
| 3.6.3 电泳 | 第30页 |
| 3.6.4 转膜（湿转膜法） | 第30页 |
| 3.6.5 封闭 | 第30页 |
| 3.6.6 一抗孵育 | 第30页 |
| 3.6.7 二抗孵育 | 第30-31页 |
| 3.6.8 ECL化学发光检测 | 第31页 |
| 3.7 siRNA转染 | 第31页 |
| 3.8 统计分析 | 第31-33页 |
| 第4章 实验结果 | 第33-43页 |
| 4.1 H_2S对HepG2细胞PCSK9表达的影响 | 第33-34页 |
| 4.1.1 不同浓度H_2S处理24小时对HepG2细胞中PCSK9蛋白表达的影响 | 第33-34页 |
| 4.1.2 H_2S处理不同时间对HepG2细胞中PCSK9蛋白表达的影响 | 第34页 |
| 4.2 H_2S对HepG2细胞脂质蓄积的影响 | 第34-36页 |
| 4.2.1 采用血清荷脂，24小时后HepG2细胞荷脂结果 | 第34-35页 |
| 4.2.2 不同浓度的H_2S处理HepG2细胞24小时后细胞荷脂结果 | 第35-36页 |
| 4.3 PCSK9 siRNA部分恢复HepG2细胞脂质摄取 | 第36-38页 |
| 4.4 H_2S对HepG2细胞磷酸化Akt表达的影响 | 第38页 |
| 4.5 H_2S对HepG2细胞SREBPs表达的影响 | 第38-39页 |
| 4.6 H_2S对HepG2细胞LDLR表达的影响 | 第39-41页 |
| 4.7 PI3K/Akt信号通路介导H_2S调节HepG2细胞脂质蓄积 | 第41-43页 |
| 第5章 讨论 | 第43-47页 |
| 第6章 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 文献综述 | 第57-69页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
