| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩写对照 | 第12-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-21页 |
| 1.1 DCs | 第14-18页 |
| 1.1.1 DCs是特异性免疫应答的启动者 | 第14-15页 |
| 1.1.2 DCs提供T细胞活化信号 | 第15-16页 |
| 1.1.3 DCs诱导机体抗肿瘤效应的细胞机制 | 第16-17页 |
| 1.1.4 调动DCs体内诱导Th9/Tc9抗肿瘤效应细胞的策略 | 第17-18页 |
| 1.2 IL-33 | 第18-20页 |
| 1.2.1 IL-33 与DCs | 第18页 |
| 1.2.2 IL-33 与CD4+ T细胞 | 第18-19页 |
| 1.2.3 IL-33 与CD8+ T细胞 | 第19-20页 |
| 1.3 小结与展望 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与试剂 | 第21-26页 |
| 2.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.2 细胞与肽 | 第21页 |
| 2.3 主要试剂 | 第21-23页 |
| 2.4 主要仪器 | 第23页 |
| 2.5 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
| 2.6 引物序列 | 第24-26页 |
| 第3章 实验方法 | 第26-32页 |
| 3.1 体外生成骨髓来源的BMDCs，CurDCs和Scl DCs | 第26页 |
| 3.2 基因表达谱分析 | 第26-27页 |
| 3.3 Q-PCR | 第27-28页 |
| 3.3.1 RNA的提取 | 第27页 |
| 3.3.2 cDNA的合成 | 第27-28页 |
| 3.3.3 qPCR | 第28页 |
| 3.4 ELISA | 第28-29页 |
| 3.4.1 ELISA检测IL-33含量 | 第28-29页 |
| 3.4.2 ELISA检测IL-9含量 | 第29页 |
| 3.4.3 ELISA检测INF-γ含量 | 第29页 |
| 3.4.4 ELISA检测IL-17含量 | 第29页 |
| 3.5 FCM | 第29-30页 |
| 3.5.1 FCM检测细胞表面分子 | 第29-30页 |
| 3.5.2 FCM检测细胞胞内分子 | 第30页 |
| 3.6 体内诱导Th9细胞 | 第30-31页 |
| 3.6.1 体内免疫小鼠 | 第30-31页 |
| 3.6.2 体外刺激扩增特异性T细胞 | 第31页 |
| 3.7 统计学方法 | 第31-32页 |
| 第4章 结果 | 第32-40页 |
| 4.1 Dectin-1信号促进DCs表达IL-33 | 第32-33页 |
| 4.2 Dectin1DCs体内诱导的主要抗肿瘤效应细胞是Th9细胞 | 第33-35页 |
| 4.3 Dectin1-DCs通过ST2促进Th9细胞分化 | 第35-37页 |
| 4.3.1 Dectin1-DCs体内促进ST2+CD4+ T细胞的产生 | 第35-36页 |
| 4.3.2 封闭ST2受体抑制Dectin1-DCs对Th9细胞的诱导作用 | 第36-37页 |
| 4.4 IL-33促进Dectin-1-DCs体内诱导Th9 | 第37-38页 |
| 4.5 IL-33 促进Dectin1DCs体内的抗肿瘤效应 | 第38页 |
| 4.6 IL-33 促进BMDCs体内诱导Treg | 第38-40页 |
| 第5章 讨论 | 第40-42页 |
| 第6章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
