| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 引言 | 第14-18页 |
| 第一章 TF-TP对蓝光诱导人视网膜色素上皮细胞损伤的作用 | 第18-35页 |
| 1.1 引言 | 第18页 |
| 1.2 实验材料 | 第18-20页 |
| 1.2.1 实验主要器材 | 第18-19页 |
| 1.2.2 实验主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.2.3 实验主要溶液配制 | 第20页 |
| 1.3 实验方法 | 第20-28页 |
| 1.3.1 细胞的培养、传代、冻存、复苏、接种 | 第20-23页 |
| 1.3.2 CCK-8法检测TF-TP对正常hRPE细胞的毒副作用 | 第23-24页 |
| 1.3.3 CCK-8法检测TF-TP对蓝光损伤hRPE细胞的最佳保护浓度 | 第24页 |
| 1.3.4 普通倒置显微镜下观察各组hRPE细胞的形态改变 | 第24页 |
| 1.3.5 透射电镜样品制备与观察 | 第24-25页 |
| 1.3.6 Hoechst染色法检测各组hRPE细胞凋亡率 | 第25页 |
| 1.3.7 Western Blot检测在不同蓝光照射时间点hRPE细胞中TF蛋白的表达变化 | 第25-27页 |
| 1.3.8 Western Blot检测各组hRPE细胞中TF、Bax和Bcl-2蛋白的表达情况 | 第27页 |
| 1.3.9 统计学处理 | 第27-28页 |
| 1.4 实验结果 | 第28-33页 |
| 1.4.1 CCK-8法检测TF-TP对正常hRPE细胞的毒副作用 | 第28页 |
| 1.4.2 CCK-8法检测TF-TP对蓝光损伤hRPE细胞的最佳保护浓度 | 第28-29页 |
| 1.4.3 普通倒置显微镜下观察各组hRPE细胞的形态改变 | 第29页 |
| 1.4.4 透射电子显微镜下各组hRPE细胞超微结构观察 | 第29-30页 |
| 1.4.5 Hoechst染色法检测各组hRPE细胞凋亡率 | 第30-31页 |
| 1.4.6 Western Blot检测不同蓝光照射时间点hRPE细胞中TF蛋白的表达变化 | 第31-32页 |
| 1.4.7 Western Blot检测hRPE细胞中TF、bax和bcl-2蛋白的表达情况 | 第32-33页 |
| 1.5 讨论 | 第33-35页 |
| 第二章 观察TF-TP对激光诱导小鼠脉络膜新生血管的作用 | 第35-44页 |
| 2.1 引言 | 第35页 |
| 2.2 实验动物和材料 | 第35-37页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第35页 |
| 2.2.2 实验主要仪器 | 第35-36页 |
| 2.2.3 实验主要试剂 | 第36-37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.3.1 动物分组 | 第37页 |
| 2.3.2 动物模型的建立 | 第37页 |
| 2.3.3 玻璃体腔给药 | 第37页 |
| 2.3.4 眼底荧光血管造影检查 | 第37-38页 |
| 2.3.5 取材及标本制作 | 第38页 |
| 2.3.6 光学显微镜观察CNV中央最大厚度 | 第38页 |
| 2.3.7 免疫组化染色法测定视网膜脉络膜组织中CD34的表达 | 第38-39页 |
| 2.3.8 Western Blot检测小鼠RPE-脉络膜复合物中TF的表达情况 | 第39-40页 |
| 2.3.9 统计学处理 | 第40页 |
| 2.4 实验结果 | 第40-42页 |
| 2.4.1 FFA检查观察各组小鼠视网膜脉络膜血管荧光素渗漏情况和渗漏率比较 | 第40-41页 |
| 2.4.2 光学显微镜下观察CNV中央最大厚度 | 第41页 |
| 2.4.3 免疫组化染色测定视网膜脉络膜组织中CD34的表达 | 第41页 |
| 2.4.4 Western Blot检测小鼠RPE-脉络膜复合物中TF的表达情况 | 第41-42页 |
| 2.5 讨论 | 第42-44页 |
| 结语 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 附录 | 第51-52页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第52-53页 |
| 统计学审核证明 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
