摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-19页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 超临界二氧化碳技术 | 第11-13页 |
1.2.1 超临界流体定义与性质 | 第11-12页 |
1.2.2 超临界二氧化碳性质 | 第12-13页 |
1.3 超临界二氧化碳流体萃取 | 第13-14页 |
1.3.1 超临界二氧化碳流体萃取的基本原理 | 第13-14页 |
1.3.2 超临界二氧化碳流体萃取的工艺特点 | 第14页 |
1.3.3 超临界二氧化碳流体萃取的应用 | 第14页 |
1.4 超临界快速溶胀法制备脂质体前体 | 第14-16页 |
1.4.1 超临界抗溶剂法 | 第15页 |
1.4.2 超临界溶液快速溶胀法 | 第15-16页 |
1.5 实验设计方案 | 第16-17页 |
1.5.1 析因实验法 | 第16页 |
1.5.2 单因素实验法 | 第16-17页 |
1.5.3 正交实验法 | 第17页 |
1.5.4 响应面实验法 | 第17页 |
1.6 课题的研究意义及研究内容 | 第17-19页 |
第二章 超临界二氧化碳流体萃取南瓜中β-胡萝卜素和α-生育酚的单因素法工艺优化研究 | 第19-32页 |
2.1 前言 | 第19-20页 |
2.2 仪器与试剂 | 第20页 |
2.2.1 实验试剂与仪器 | 第20页 |
2.2.2 主要试剂 | 第20页 |
2.3 实验方法 | 第20-23页 |
2.3.1 水分检测 | 第20-21页 |
2.3.2 制备南瓜样品 | 第21页 |
2.3.3 超临界二氧化碳萃取 | 第21页 |
2.3.4 含量分析 | 第21-23页 |
2.3.5 实验设计 | 第23页 |
2.4 结果与讨论 | 第23-31页 |
2.4.1 标准曲线的绘制 | 第23-26页 |
2.4.2 萃取压力的影响 | 第26-27页 |
2.4.3 萃取温度的影响 | 第27-28页 |
2.4.4 二氧化碳流速的影响 | 第28-29页 |
2.4.5 南瓜籽南瓜肉比例的影响 | 第29-30页 |
2.4.6 萃取时间的影响 | 第30-31页 |
2.5 本章小结 | 第31-32页 |
第三章 超临界二氧化碳萃取南瓜中β-胡萝卜素和α-生育酚的响应面法工艺优化 | 第32-47页 |
3.1 前言 | 第32页 |
3.2 仪器与试剂 | 第32-33页 |
3.2.1 主要仪器 | 第32-33页 |
3.2.2 主要试剂 | 第33页 |
3.3 实验方法 | 第33-36页 |
3.3.1 水分检测 | 第33页 |
3.3.2 制备南瓜样品 | 第33页 |
3.3.3 超临界二氧化碳萃取 | 第33-34页 |
3.3.4 含量分析 | 第34页 |
3.3.5 实验设计 | 第34-36页 |
3.4 结果与讨论 | 第36-46页 |
3.4.1 标准曲线的绘制 | 第36页 |
3.4.2 RSM模型分析 | 第36-41页 |
3.4.3 响应面分析 | 第41-45页 |
3.4.4 萃取工艺优化 | 第45-46页 |
3.5 本章小结 | 第46-47页 |
第四章 超临界溶液快速溶胀法制备脂质体前体研究 | 第47-59页 |
4.1 前言 | 第47-48页 |
4.2 仪器与试剂 | 第48-49页 |
4.2.1 主要仪器 | 第48页 |
4.2.2 主要试剂 | 第48-49页 |
4.3 实验方法 | 第49-52页 |
4.3.1 维生索C脂质体前体的制备 | 第49-50页 |
4.3.2 维生素C脂质体的制备 | 第50页 |
4.3.3 乙醇注入法制备维生素C脂质体 | 第50页 |
4.3.4 维生素C含量分析 | 第50页 |
4.3.5 载药量测试 | 第50-51页 |
4.3.6 微观形貌表征 | 第51页 |
4.3.7 实验设计 | 第51-52页 |
4.4 结果与讨论 | 第52-58页 |
4.4.1 标准曲线的绘制 | 第52-53页 |
4.4.2 RSM模型分析 | 第53-55页 |
4.4.3 响应面分析 | 第55-57页 |
4.4.4 超临界快速溶胀法制备维生素C脂质体前体工艺优化 | 第57页 |
4.4.5 微观形貌观察 | 第57-58页 |
4.5 本章小结 | 第58-59页 |
第五章 总结与展望 | 第59-61页 |
5.1 全文总结 | 第59-60页 |
5.2 全文展望 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-71页 |
作者简介 | 第71页 |
研究生期间发表的学术论文及专利清单 | 第71页 |