| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 PRMTs家族研究概况 | 第11-16页 |
| 1.1.1 PRMTs的发现 | 第11页 |
| 1.1.2 PRMTs的结构和分类 | 第11-13页 |
| 1.1.3 PRMTs的活性部位及底物结合 | 第13-14页 |
| 1.1.4 精氨酸甲基化与去甲基化 | 第14-16页 |
| 1.2 PRMT1研究进展 | 第16-21页 |
| 1.2.1 PRMT1的生物学特性 | 第16页 |
| 1.2.2 底物与底物结合特征 | 第16-17页 |
| 1.2.3 PRMT1的生物学功能 | 第17-21页 |
| 1.3 研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第2章 材料与方法 | 第23-36页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第23页 |
| 2.1.3 主要化学药品及试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第24-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-36页 |
| 2.2.1 基因的克隆 | 第25-29页 |
| 2.2.2 PCR产物纯化及测序 | 第29-30页 |
| 2.2.3 生物信息学分析 | 第30-31页 |
| 2.2.4 基因的时空表达分析 | 第31-32页 |
| 2.2.5 C2C12细胞的复苏、培养及冻存 | 第32-33页 |
| 2.2.6 重组质粒的构建及鉴定 | 第33页 |
| 2.2.7 质粒转染 | 第33-34页 |
| 2.2.8 组织蛋白样品的制备 | 第34页 |
| 2.2.9 Western Blot的检测分析 | 第34-35页 |
| 2.2.10 统计分析 | 第35-36页 |
| 第3章 结果与分析 | 第36-56页 |
| 3.1 猪PRMT1基因的克隆 | 第36-44页 |
| 3.1.1 总RNA的提取和检测结果 | 第36页 |
| 3.1.2 猪PRMT1基因的cDNA全长的克隆 | 第36-38页 |
| 3.1.3 猪PRMT1基因的cDNA序列分析 | 第38-39页 |
| 3.1.4 进化树分析 | 第39-41页 |
| 3.1.5 猪PRMT1基因启动子克隆及分析 | 第41-44页 |
| 3.2 猪PRMT1的生物信息学分析 | 第44-49页 |
| 3.2.1 猪PRMT1蛋白的理化性质 | 第44页 |
| 3.2.2 猪PRMT1蛋白的疏水结构 | 第44页 |
| 3.2.3 猪PRMT1蛋白的磷酸化位点及二硫键预测分析 | 第44-45页 |
| 3.2.4 猪PRMT1蛋白的糖基化位点分析 | 第45-46页 |
| 3.2.5 猪PRMT1蛋白的二级结构 | 第46-47页 |
| 3.2.6 猪PRMT1蛋白信号肽与跨膜结构分析 | 第47-48页 |
| 3.2.7 猪PRMT1蛋白结构域分析及亚细胞定位 | 第48页 |
| 3.2.8 猪PRMT1蛋白质三级结构预测 | 第48-49页 |
| 3.3 猪PRMT1基因的时空表达分析 | 第49-51页 |
| 3.3.1 猪PRMT1在不同组织中的表达分析 | 第49-50页 |
| 3.3.2 PRMT1在猪骨骼肌不同发育时期的表达分析 | 第50-51页 |
| 3.4 PRMT1蛋白对C2C12细胞增殖与分化的影响 | 第51-56页 |
| 3.4.1 PRMT家族成员在C2C12细胞分化过程中的表达 | 第51-53页 |
| 3.4.2 猪pCDNA3.1(+)GFP-PRMT1真核表达载体的构建 | 第53页 |
| 3.4.3 超表达PRMT1对C2C12细胞增殖分化的影响 | 第53-56页 |
| 第4章 讨论 | 第56-59页 |
| 4.1 猪PRMT1基因的克隆与生物信息学分析 | 第56-57页 |
| 4.2 猪PRMT1基因的时空表达分析 | 第57页 |
| 4.3 PRMT1对C2C12细胞增殖分化的影响 | 第57-59页 |
| 第5章 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
