| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第10-18页 |
| 1.1.1 抑郁症的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.1.2 慢性温和应激动物模型的研究 | 第11-13页 |
| 1.1.3 抗抑郁药物的研究 | 第13-14页 |
| 1.1.4 小胶质细胞的研究 | 第14-16页 |
| 1.1.5 神经发生的研究 | 第16-18页 |
| 1.2 研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 人参皂苷Rb1对CMS模型小鼠行为影响的研究 | 第19-27页 |
| 2.1 引言 | 第19-20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第20-21页 |
| 2.2.3 实验药品与试剂 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 人参皂苷Rb1给药方式 | 第21页 |
| 2.3.2 小鼠体重测量与糖水偏好实验 | 第21-22页 |
| 2.3.3 小鼠悬尾实验 | 第22页 |
| 2.3.4 小鼠强迫游泳实验 | 第22页 |
| 2.3.5 小鼠自主活动实验 | 第22页 |
| 2.3.6 统计分析 | 第22-23页 |
| 2.4 实验结果 | 第23-26页 |
| 2.4.1 人参皂苷Rb1的纯度测定 | 第23页 |
| 2.4.2 人参皂苷Rb1缓解CMS引起的生理变化 | 第23-24页 |
| 2.4.3 人参皂苷Rb1改善CMS引起的抑郁样行为 | 第24-26页 |
| 2.5 本章小结与讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 人参皂苷Rb1对小胶质细胞激活状态影响的研究 | 第27-43页 |
| 3.1 引言 | 第27-28页 |
| 3.2 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第28页 |
| 3.2.2 实验仪器和设备 | 第28-29页 |
| 3.2.3 实验药品与试剂 | 第29页 |
| 3.3 实验方法与步骤 | 第29-35页 |
| 3.3.1 人参皂苷Rb1给药方式 | 第29-30页 |
| 3.3.2 提取组织总RNA | 第30-31页 |
| 3.3.3 总RNA反转录为总cDNA | 第31-32页 |
| 3.3.4 Real-Time PCR测量细胞因子 | 第32-33页 |
| 3.3.5 脑片的固定 | 第33-34页 |
| 3.3.6 免疫组织化学染色 | 第34-35页 |
| 3.3.7 数据分析 | 第35页 |
| 3.4 实验结果 | 第35-42页 |
| 3.4.1 人参皂苷Rb1缓解由CMS引起的炎症反应 | 第35-39页 |
| 3.4.2 人参皂苷Rb1影响小胶质细胞的激活表型改善抑郁 | 第39-42页 |
| 3.5 本章小结与讨论 | 第42-43页 |
| 第四章 人参皂苷Rb1对神经发生影响的研究 | 第43-54页 |
| 4.1 引言 | 第43-44页 |
| 4.2 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第44页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第44-45页 |
| 4.2.3 实验药品与试剂 | 第45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.3.1 人参皂苷Rb1的给药方式 | 第45-46页 |
| 4.3.2 脑片的固定和神经前体细胞培养 | 第46页 |
| 4.3.3 神经干细胞的传代与分化 | 第46-47页 |
| 4.3.4 小胶质细胞条件培养基的制备 | 第47页 |
| 4.3.5 免疫组织化学 | 第47页 |
| 4.3.6 数据分析 | 第47页 |
| 4.4 实验结果 | 第47-52页 |
| 4.4.1 人参皂苷Rb1改善CMS引起的神经发生的减少 | 第47-50页 |
| 4.4.2 CMS对海马完整性的影响 | 第50页 |
| 4.4.3 人参皂苷Rb1对体外培养神经前体细胞的影响 | 第50-52页 |
| 4.5 本章小结与讨论 | 第52-54页 |
| 第五章 总结与展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 攻硕期间的研究成果 | 第65页 |
