| 英文缩略语词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| 英文摘要 | 第11-16页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 第一部分 1800MHz微波辐射导致SD雄鼠生精障碍的模型构建 | 第19-31页 |
| 引言 | 第19页 |
| 材料和方法 | 第19-23页 |
| 1. 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 实验动物 | 第19页 |
| 1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.3 主要试剂 | 第20页 |
| 2. 方法 | 第20-23页 |
| 2.1 动物分组 | 第20-21页 |
| 2.2 微波辐射 | 第21页 |
| 2.3 一般情况观察 | 第21页 |
| 2.4 性行为学指标检测 | 第21-22页 |
| 2.5 精子参数检测 | 第22页 |
| 2.6 HE染色 | 第22-23页 |
| 3. 统计学处理 | 第23页 |
| 结果 | 第23-28页 |
| 1. 雄鼠一般情况比较 | 第23-25页 |
| 1.1 体重 | 第23-24页 |
| 1.2 皮肤体毛 | 第24页 |
| 1.3 其它 | 第24-25页 |
| 2. 辐射对雄鼠性行为学指标影响 | 第25-26页 |
| 3. 辐射对各组雄鼠精子参数的影响 | 第26-27页 |
| 4. 睾丸电镜和附睾HE染色 | 第27-28页 |
| 讨论 | 第28-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 第二部分 巴戟天多糖对 1800MHz微波辐射所致SD大鼠生精障碍的保护作用 | 第31-47页 |
| 引言 | 第31页 |
| 材料和方法 | 第31-36页 |
| 1. 材料 | 第31-33页 |
| 1.1 实验动物 | 第31页 |
| 1.2 主要仪器 | 第31-32页 |
| 1.3 主要试剂 | 第32-33页 |
| 2. 方法 | 第33-36页 |
| 2.1 巴戟天多糖提取 | 第33-34页 |
| 2.2 动物分组和灌胃给药 | 第34-35页 |
| 2.3 睾丸、附睾湿重及系数分析 | 第35页 |
| 2.4 性行为学指标检测 | 第35页 |
| 2.5 精子参数检测 | 第35页 |
| 2.6 血清性激素水平检测 | 第35-36页 |
| 2.7 HE染色 | 第36页 |
| 3. 统计学处理 | 第36页 |
| 结果 | 第36-43页 |
| 1. 各组睾丸、附睾湿重及系数比较 | 第36-37页 |
| 2. 各组雄鼠性行为学指标比较 | 第37-39页 |
| 3. 各组雄鼠精子参数指标比较 | 第39-40页 |
| 4. 各组血清FSH、LH和T水平比较 | 第40-41页 |
| 5. 各组睾丸HE染色结果比较 | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 第三部分 巴戟天多糖对 1800MHz微波辐射所致生精障碍SD大鼠下丘脑Orexin-A神经元的影响 | 第47-67页 |
| 引言 | 第47页 |
| 材料和方法 | 第47-54页 |
| 1. 材料 | 第47-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第47-48页 |
| 1.2 主要仪器 | 第48页 |
| 1.3 主要试剂 | 第48-49页 |
| 2. 方法 | 第49-54页 |
| 2.1 动物分组和灌胃给药 | 第49-50页 |
| 2.2 下丘脑和垂体尼氏染色 | 第50-51页 |
| 2.3 下丘脑和垂体Orexin免疫荧光染色 | 第51页 |
| 2.4 实时荧光PCR检测下丘脑组织中Orexin-A mRNA表达 | 第51-53页 |
| 2.5 摄食和饮水量检测 | 第53-54页 |
| 3. 统计学处理 | 第54页 |
| 结果 | 第54-64页 |
| 1. 下丘脑Nissl染色结果 | 第54-55页 |
| 2. 垂体 Nissl 染色结果 | 第55-56页 |
| 3. 下丘脑Orexin免疫荧光染色结果 | 第56-58页 |
| 4. 垂体Orexin免疫荧光染色结果 | 第58-59页 |
| 5. Orexin A实时荧光PCR检测结果 | 第59-61页 |
| 5.1 琼脂糖凝胶电泳结果 | 第59页 |
| 5.2 标准曲线 | 第59-61页 |
| 5.3 Orexin A mRNA相对定量结果 | 第61页 |
| 6. 各组雄鼠摄食和饮水量 | 第61-64页 |
| 讨论 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 综述 | 第74-86页 |
| References | 第81-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
