摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第1章 引言 | 第11-18页 |
·嗜水气单胞菌研究概述 | 第11-12页 |
·概述 | 第11页 |
·嗜水气单胞菌研究现状 | 第11-12页 |
·生物膜研究现状 | 第12-15页 |
·生物膜形态观察 | 第12-13页 |
·生物膜形成调控机制研究 | 第13-14页 |
·耐药性机制研究 | 第14-15页 |
·转座子和转座子标签技术 | 第15-17页 |
·转座子 | 第15页 |
·转座子标签诱变技术 | 第15-16页 |
·Mini-Tn10的转座诱变机制 | 第16-17页 |
·主要研究内容和本研究的意义 | 第17-18页 |
第2章 致病性嗜水气单胞菌生物膜的形成特性 | 第18-26页 |
·材料与方法 | 第18-20页 |
·菌株及培养条件 | 第18页 |
·生物膜的形成与测定 | 第18-19页 |
·不同培养时间的生物膜测定 | 第19页 |
·不同初始菌液浓度的生物膜测定 | 第19页 |
·不同培养温度的生物膜测定 | 第19页 |
·不同pH 值对嗜水气单胞菌生物膜形成的影响 | 第19页 |
·Ca~(2+)、Mg~(2+)对于嗜水气单胞菌生物膜形成的影响 | 第19页 |
·不同组织提取液包被对于嗜水气单胞菌生物膜形成的影响 | 第19-20页 |
·数据处理 | 第20页 |
·结果与分析 | 第20-24页 |
·培养时间对嗜水气单胞菌成膜的影响 | 第20页 |
·初始菌液浓度对嗜水气单胞菌成膜的影响 | 第20-21页 |
·培养温度对嗜水气单胞菌成膜的影响 | 第21-22页 |
·不同初始pH 值对嗜水气单胞菌生物膜形成的影响 | 第22页 |
·不同Ca~(2+)、Mg~(2+)浓度对于嗜水气单胞菌生物膜形成的影响 | 第22-23页 |
·鳗鲡不同组织提取液对嗜水气单胞菌成膜的影响 | 第23-24页 |
·讨论 | 第24-26页 |
第3章 嗜水气单胞菌成膜缺陷突变株构建、筛选与鉴定 | 第26-40页 |
·材料 | 第26-27页 |
·试验用菌 | 第26页 |
·主要实验仪器 | 第26-27页 |
·主要试剂 | 第27页 |
·方法 | 第27-33页 |
·细菌结合转化构建嗜水气单胞菌突变体库 | 第27-29页 |
·嗜水气单胞菌的成膜缺陷菌株的筛选 | 第29页 |
·转座突变菌株的PCR鉴定和Southern杂交鉴定 | 第29-33页 |
·结果与分析 | 第33-39页 |
·质粒pLOF/Km的提取及转化E.coli Sm10 | 第33-34页 |
·成膜缺陷突变株的筛选结果 | 第34-35页 |
·突变株的PCR 鉴定 | 第35-36页 |
·突变株的Southern鉴定 | 第36-39页 |
·讨论 | 第39-40页 |
第4章 突变株中mini-Tn10插入位点侧翼序列分析 | 第40-54页 |
·材料和方法 | 第40-41页 |
·试验用菌和载体 | 第40页 |
·主要实验仪器 | 第40-41页 |
·主要试剂 | 第41页 |
·方法 | 第41-47页 |
·基因组DNA 的抽取 | 第41页 |
·热不对称PCR 法克隆转座子插入位点侧翼序列 | 第41-45页 |
·PCR 产物回收、连接、转化和测序 | 第45-46页 |
·序列分析 | 第46-47页 |
·结果 | 第47-52页 |
·基因组DNA 提取的结果 | 第47页 |
·Actail-PCR结果 | 第47-48页 |
·Tail-PCR结果 | 第48-49页 |
·基因序列分析结果 | 第49-52页 |
·讨论 | 第52-54页 |
第5章 嗜水气单胞菌成膜缺陷突变株生物学特性研究 | 第54-60页 |
·材料 | 第54-55页 |
·试验用菌 | 第54页 |
·主要实验仪器 | 第54页 |
·主要试剂 | 第54-55页 |
·方法 | 第55-56页 |
·生长曲线的测定 | 第55页 |
·对鳗鲡肠粘液粘附实验 | 第55页 |
·胞内存活能力测定 | 第55-56页 |
·结果与分析 | 第56-58页 |
·生长曲线 | 第56-57页 |
·对鳗鲡肠粘液的粘附作用 | 第57页 |
·在鳗鲡外周血巨噬细胞内存活能力 | 第57-58页 |
·讨论 | 第58-60页 |
第6章 总结与展望 | 第60-61页 |
·总结 | 第60页 |
·展望 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-69页 |
在学期间发表的学术论文 | 第69页 |