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人卵巢癌细胞对人脐带间充质干细胞的影响

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
英文缩略词表第10-11页
一 引言第11-14页
二 实验材料第14-19页
    2.1 主要试剂及实验材料第14-15页
    2.2 主要仪器设备第15-16页
    2.3 常用溶液的配制第16-19页
        2.3.1 完全培养基DMEM的配制第16页
        2.3.2 配制PBS第16-17页
        2.3.3 胰蛋白酶的配制第17页
        2.3.4 电泳缓冲液(Running buffer)的配制第17页
        2.3.5 转膜缓冲液(Transfer buffer)的配制第17-18页
        2.3.6 TBST Buffer液的配制第18页
        2.3.7 显影液和定影液的配制第18页
        2.3.8 配制明胶第18页
        2.3.9 配制饥饿培养基第18-19页
三 实验方法第19-28页
    3.1 HUMSC的分离和培养第19-21页
        3.1.1 HUMSCs的分离第19页
        3.1.2 HUMSCs的传代第19-20页
        3.1.3 HUMSC的冻存第20页
        3.1.4 HUMSCs的复苏第20-21页
    3.2 HUMSC生物学特性鉴定第21-28页
        3.2.1 HUMSCs形态学的观察第21页
        3.2.2 HUMSCs标准曲线的制作第21-22页
        3.2.3 HUMSCs生长曲线的制作第22页
        3.2.4 HUMSCs的细胞表面标记物的检测第22页
        3.2.5 上清液的收集第22页
        3.2.6 蛋白的提取第22-23页
        3.2.7 Wensten Blot第23-25页
        3.2.8 HO8910上清液对HUMSC增殖的影响第25-26页
        3.2.9 共培养对HUMSC增殖的影响第26页
        3.2.10 MTT法检测共培养对HUMSC细胞迁移的影响第26-28页
四 实验结果与分析第28-38页
    4.1 HUMSCs的分离与培养第28-29页
    4.2 HUMSC标准曲线的绘制第29-30页
    4.3 HUMSC生长曲线的绘制第30-31页
    4.4 HUMSC表面标记物的检测第31-33页
    4.5 共培养对HUMSC生物功能的影响第33-38页
        4.5.1 HO8910上清液对HUMSC细胞增殖的影响第33-34页
        4.5.2 培养HO8910上清液对HUMSC细胞迁移的影响第34-35页
        4.5.3 培养HO8910上清液对HUMSC细胞凋亡的影响第35页
        4.5.4 Transwell共培养对HUMSC细胞增殖的影响第35-36页
        4.5.5 Transwell共培养对HUMSC细胞迁移的影响第36-38页
五 讨论第38-40页
六 结论第40-41页
文献综述第41-46页
参考文献第46-49页
致谢第49页

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