| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 略缩词表 | 第8-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-28页 |
| ·藏猪及其研究概况 | 第12-13页 |
| ·藏猪简介 | 第12页 |
| ·藏猪生产性能 | 第12-13页 |
| ·藏猪的研究及利用现状 | 第13页 |
| ·线粒体(mitochondrion) | 第13-16页 |
| ·线粒体的结构 | 第13-15页 |
| ·线粒体的数目 | 第15页 |
| ·线粒体的功能 | 第15-16页 |
| ·线粒体DNA(mitochondrial DNA,mtDNA) | 第16-20页 |
| ·mtDNA概述 | 第16页 |
| ·mtDNA结构特征 | 第16-17页 |
| ·mtDNA遗传特性 | 第17-18页 |
| ·mtDNA密码子 | 第18-19页 |
| ·mtDNA研究意义 | 第19-20页 |
| ·线粒体DNA拷贝数(mtDNA copy number) | 第20页 |
| ·高原低氧适应性及其研究现状 | 第20-23页 |
| ·高原低氧适应性概述 | 第20-21页 |
| ·人类及其它动物高原低氧适应性 | 第21-22页 |
| ·藏猪高原低氧适应性研究现状 | 第22页 |
| ·线粒体与高原低氧适应性 | 第22-23页 |
| ·高原脱习服与氧中毒 | 第23-24页 |
| ·高原脱习服及氧中毒概述 | 第23-24页 |
| ·人类及藏猪脱习服研究现状 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR技术 | 第24-26页 |
| ·Long PCR技术 | 第26-27页 |
| ·本试验设计的相关原理 | 第27-28页 |
| 2 研究目的与意义 | 第28-29页 |
| ·研究目的 | 第28页 |
| ·研究意义 | 第28-29页 |
| 3 材料和方法 | 第29-36页 |
| ·试验材料 | 第29-30页 |
| ·试验动物 | 第29页 |
| ·样品采集 | 第29页 |
| ·主要试剂 | 第29-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30页 |
| ·试验地点 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30-36页 |
| ·基因组DNA抽提 | 第30-31页 |
| ·DNA产物的检测 | 第31-32页 |
| ·Q-PCR引物设计及合成 | 第32-33页 |
| ·Q-PCR引物的稀释 | 第33页 |
| ·Long PCR引物合成 | 第33页 |
| ·Long PCR反应体系 | 第33-34页 |
| ·样品中mtDNA拷贝数的定量 | 第34-35页 |
| ·数据分析 | 第35-36页 |
| 4 结果与分析 | 第36-51页 |
| ·Long PCR扩增结果 | 第36-37页 |
| ·扩增标准曲线 | 第37页 |
| ·Q-PCR扩增结果 | 第37-40页 |
| ·高原藏猪不同组织mtDNA拷贝数差异分析 | 第40-41页 |
| ·平原藏猪不同组织mtDNA拷贝数差异分析 | 第41-42页 |
| ·高原藏猪与平原藏猪不同组织mtDNA拷贝数比较 | 第42-48页 |
| ·大脑 | 第43-44页 |
| ·心肌 | 第44-45页 |
| ·肝脏 | 第45页 |
| ·脾脏 | 第45-46页 |
| ·肺 | 第46-47页 |
| ·肾脏 | 第47页 |
| ·眼肌 | 第47-48页 |
| ·腰肌 | 第48页 |
| ·各组织mtDNA拷贝数变化程度分析 | 第48-49页 |
| ·各组织mtDNA拷贝数聚类图分析 | 第49-51页 |
| 5 讨论 | 第51-57页 |
| ·荧光定量法检测线粒体DNA的拷贝数具有独特的优势 | 第51-52页 |
| ·肌肉纤维类型显著影响线粒体DNA拷贝数 | 第52-53页 |
| ·平原环境导致藏猪各组织线粒体DNA拷贝数减少 | 第53-54页 |
| ·低线粒体DNA拷贝数利于降低ROS活性 | 第54-55页 |
| ·能量代谢效率提高清理多余的线粒体 | 第55-57页 |
| 6 结论 | 第57页 |
| 7 本研究创新点 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
