| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 1. 材料 | 第15-17页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·主要试剂 | 第15页 |
| ·主要仪器设备 | 第15-16页 |
| ·主要试剂配制 | 第16-17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-23页 |
| ·OxyHb制备 | 第17页 |
| ·SAH模型的制备 | 第17-18页 |
| ·石蜡切片制作 | 第18页 |
| ·小鼠脑组织的检测方法 | 第18-22页 |
| ·磷酸化p-p38的免疫组织化学法测 | 第18-19页 |
| ·线粒体膜电位检测 | 第19-20页 |
| ·ATP含量的检测 | 第20页 |
| ·细胞色素c(Cytc)的检测 | 第20-21页 |
| ·nNOS的免疫组化检测 | 第21-22页 |
| ·TUNEL检测 | 第22页 |
| ·LDH含量测 | 第22页 |
| ·统计学分析 | 第22-23页 |
| 3. 实验结果 | 第23-27页 |
| ·SB203580抑制SAH后皮层中p-p38的表达 | 第23页 |
| ·SB203580对SAH后皮层中线粒体的保护 | 第23页 |
| ·SB203580增加SAH后皮层中ATP.含量 | 第23-24页 |
| ·SB203580抑制SAH后皮层中Cytc向细胞质释放 | 第24页 |
| ·nNOS在各实验组不同时间点的检测变化 | 第24-25页 |
| ·SB203580抑制SAH后皮层神经细胞凋亡 | 第25页 |
| ·SB203580对SAH后皮层神经细胞的保护作用 | 第25-27页 |
| 4. 讨论 | 第27-34页 |
| ·SB203580抑制SAH后p-p38的表达 | 第27页 |
| ·SB203580抑制小鼠SAH后的皮层线粒体膜电位去极化 | 第27-28页 |
| ·SB203580在SAH后EBI时期促进ATP的生成 | 第28页 |
| ·SB203580在SAH后EBI时期起到神经保护作用 | 第28-34页 |
| 5.结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-41页 |
| 附图 | 第41-50页 |
| 综述 | 第50-67页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 附录 | 第67-69页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
