| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-18页 |
| 1 水稻转基因技术 | 第9-13页 |
| ·基因枪法 | 第9页 |
| ·农杆菌介导法 | 第9-10页 |
| ·其他水稻转基因方法 | 第10页 |
| ·PEG转化法 | 第10页 |
| ·电激法 | 第10页 |
| ·花粉管通道法 | 第10页 |
| ·水稻农杆菌转化技术 | 第10-12页 |
| ·水稻农杆菌转化技术的发展过程 | 第10-11页 |
| ·影响水稻农杆菌转化的因素 | 第11-12页 |
| ·转基因水稻的鉴定方法 | 第12页 |
| ·水稻农杆菌转化技术的发展与应用现状 | 第12-13页 |
| 2 茉莉素与植物叶片衰老 | 第13-16页 |
| ·JA的生物合成 | 第13-14页 |
| ·JA的信号转导 | 第14-16页 |
| ·JA诱导拟南芥的叶片衰老 | 第16页 |
| ·RCA的作用 | 第16页 |
| 3 研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 第二章 材料与方法 | 第18-24页 |
| 1 籼稻遗传转化研究的材料与方法 | 第18-21页 |
| ·植物材料和农杆菌 | 第18页 |
| ·培养基 | 第18-19页 |
| ·诱导愈伤组织及农杆菌转化 | 第19-20页 |
| ·诱导愈伤组织 | 第19页 |
| ·农杆菌转化 | 第19页 |
| ·预分化 | 第19页 |
| ·分化 | 第19-20页 |
| ·壮苗 | 第20页 |
| ·转化水稻的鉴定 | 第20-21页 |
| ·GUS染色 | 第20页 |
| ·提取转基因水稻的叶片DNA | 第20-21页 |
| ·PCR检测标记基因证明转化成功与否 | 第21页 |
| 2 茉莉素调控叶片衰老机理研究的材料与方法 | 第21-24页 |
| ·植物材料与种植方法 | 第21页 |
| ·拟南芥叶片衰老处理方法 | 第21页 |
| ·鉴定rca-1和rca-2及观察其表型 | 第21-22页 |
| ·提取总蛋白 | 第22页 |
| ·半定量RT-PCR | 第22-23页 |
| ·Northern blot实验 | 第23页 |
| ·Western blot实验 | 第23-24页 |
| 第三章 结果与分析 | 第24-32页 |
| 1 籼稻遗传转化 | 第24-29页 |
| ·诱导培养基及培养条件的优化 | 第24-25页 |
| ·2,4-D浓度对93-11愈伤组织诱导率的影响 | 第24页 |
| ·培养温度对愈伤生长的影响 | 第24-25页 |
| ·共培养基PH值的优化 | 第25页 |
| ·增加恢复培养步骤去掉筛选步骤保证了转化成功率 | 第25-26页 |
| ·分化各种激素比例组合对分化的影响 | 第26页 |
| ·93-11农杆菌转化各个时期的愈伤组织或苗的图 | 第26-29页 |
| 2 茉莉素调控叶片衰老机理 | 第29-32页 |
| ·证实了RCA蛋白在JA诱导的叶片衰老中受到依赖COI1的JA调控 | 第29页 |
| ·RCA在JA诱导的叶片衰老中转录水平也受到依赖COI1的JA调控 | 第29-30页 |
| ·依赖COI1的JA抑制蛋白RCA在JA诱导的叶片衰老中起重要作用 | 第30页 |
| ·RCA突变引起的衰老与JA含量上升无关 | 第30-32页 |
| 第四章 讨论 | 第32-34页 |
| 1 籼稻的遗传转化 | 第32-33页 |
| 2 JA调控拟南芥的叶片衰老 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-42页 |
| 附录1:文中未注明缩写词 | 第42-43页 |
| 附录2:发表论文 | 第43-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 作者简历 | 第47页 |
