摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
主要符号与缩写 | 第11-13页 |
第一章 绪论 | 第13-44页 |
1 活性氧生物学意义及研究进展 | 第13-14页 |
2 微流控分析系统细胞组分分析 | 第14-35页 |
·细胞提取液分析 | 第15-16页 |
·单细胞分析 | 第16-35页 |
3 微流控芯片研究细胞活性氧研究进展 | 第35-36页 |
4 本论文研究内容 | 第36页 |
参考文献 | 第36-44页 |
第二章 微流控芯片电泳结合激光诱导荧光同时定量检测巨噬细胞RAW 2647 提取液中的超氧阴离子和过氧化氢 | 第44-60页 |
1. 引言 | 第44-46页 |
2 实验部分 | 第46-49页 |
·药品及试剂 | 第46页 |
·模拟生物实验检测 | 第46页 |
·RAW264.7 细胞的培养 | 第46-47页 |
·RAW264.7 细胞提取液的制备 | 第47页 |
·芯片制作 | 第47页 |
·MCE-LIF检测 | 第47-49页 |
·芯片电泳 | 第49页 |
·安全注意事项 | 第49页 |
3 结果与讨论 | 第49-56页 |
·DBZTC和FS衍生化条件的优化 | 第49-50页 |
·DBZTC和FS的选择性 | 第50页 |
·MCE分离条件的优化 | 第50-52页 |
·线性范围,重现性,检测限 | 第52-53页 |
·模拟生物学实验 | 第53-55页 |
·巨噬细胞RAW264.7 提取液的分析 | 第55-56页 |
4 结论 | 第56页 |
参考文献 | 第56-60页 |
第三章 双校正系数法:基于黄嘌呤/黄嘌呤氧化酶体系和微流控芯片系统同时定量检测肝癌细胞中超氧阴离子和过氧化氢的校准方法 | 第60-73页 |
1 前言 | 第60-61页 |
2 实验部分 | 第61-63页 |
·药品及试剂 | 第61页 |
·肝癌细胞培养及提取液制备 | 第61-62页 |
·细胞提取液中XA/XO体系对O_2~(·–)和H_2O_2 的校准 | 第62页 |
·细胞提取液中XA/XO体系O_2~(·-)和H_2O_2的产生速率 | 第62页 |
·肝癌细胞提取液分析 | 第62-63页 |
3 结果与讨论 | 第63-69页 |
·细胞提取液中XA/XO体系中O_2~(·-)和H_2O_2的动力学产生过程 | 第63-64页 |
·细胞提取液中XA/XO体系中O_2~(·-)的校准 | 第64-65页 |
·细胞提取液中XA/XO体系中H2 O2 的校准 | 第65-67页 |
·黄嘌呤/黄嘌呤氧化酶体系中O_2~(·-)和H_2O_2的生成速率 | 第67-68页 |
·肝癌细胞提取液分析 | 第68-69页 |
4 结论 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-73页 |
第四章 集成微流控系统高通量同时检测单个U937 细胞中超氧阴离子和过氧化氢 | 第73-91页 |
1 引言 | 第73-75页 |
2 实验部分 | 第75-78页 |
·药品及试剂 | 第75页 |
·细胞培养 | 第75页 |
·细胞样品的预处理 | 第75-76页 |
·微流控系统 | 第76-77页 |
·微流控芯片的操作 | 第77-78页 |
·U937 细胞的FDA-PI双重染色 | 第78页 |
·数据处理 | 第78页 |
3 结果与讨论 | 第78-87页 |
·单细胞进样和细胞溶膜 | 第78-80页 |
·细胞活性验证 | 第80-81页 |
·分离及定性 | 第81-84页 |
·细胞之间的异质性 | 第84-87页 |
4 结论 | 第87页 |
参考文献 | 第87-91页 |
第五章 层流结合可逆荧光探针同时检测单细胞水平的氧化还原态 | 第91-98页 |
1 引言 | 第91-92页 |
2 材料和方法 | 第92-94页 |
2-1 芯片制作 | 第92-93页 |
2-2 正常肝细胞与肝癌细胞培养 | 第93页 |
2-3 细胞在通道内的固定 | 第93页 |
2-4 流型验证 | 第93页 |
2-5 氧化还原态的测定 | 第93页 |
2-6 数据处理 | 第93-94页 |
3 结果与讨论 | 第94-96页 |
3-1 探针 | 第94-95页 |
3-2 流型表征 | 第95页 |
3-3 剪切力对细胞活性的影响 | 第95-96页 |
4 结论 | 第96页 |
参考文献 | 第96-98页 |
结论与展望 | 第98-100页 |
1. 总结 | 第98页 |
2 展望 | 第98-100页 |
作者发表的学术论文及参加的课题 | 第100-101页 |
致谢 | 第101页 |