| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 符号说明及缩写词 | 第16-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-41页 |
| ·乳酸菌 | 第17-18页 |
| ·乳酸菌简介 | 第17页 |
| ·乳杆菌简介 | 第17-18页 |
| ·Lb.plantarum和Lb.brevis简介 | 第18页 |
| ·乳杆菌的有氧代谢 | 第18-24页 |
| ·乳杆菌的葡萄糖代谢 | 第18-21页 |
| ·Lb.plantarm的有氧代谢 | 第21-23页 |
| ·Lb.brevis的有氧代谢 | 第23-24页 |
| ·乳酸菌与氧胁迫 | 第24-31页 |
| ·氧胁迫来源及毒性机制 | 第24-27页 |
| ·乳酸菌对抗氧胁迫的策略 | 第27页 |
| ·酸胁迫与氧胁迫对乳酸菌的共同作用 | 第27-28页 |
| ·乳杆菌的过氧化氢酶、代谢与H_2O_2的产生 | 第28-31页 |
| ·乳酸菌的有氧呼吸研究进展 | 第31-37页 |
| ·乳酸菌最基本的呼吸体系 | 第31-32页 |
| ·具有有氧呼吸能力或潜力的乳酸菌 | 第32-34页 |
| ·有氧呼吸对乳酸菌生长代谢的作用 | 第34-35页 |
| ·有氧呼吸代谢的应用和研究意义 | 第35-36页 |
| ·Lb.plantarum的电子传递链 | 第36-37页 |
| ·B.subtilis及益生菌制剂 | 第37-39页 |
| ·益生菌与肠道菌群 | 第37-38页 |
| ·饲用芽孢杆菌的生理功能 | 第38页 |
| ·B.subtilis增加和维持有益菌的机理 | 第38-39页 |
| ·本文研究内容 | 第39-41页 |
| 第二章 Lb.plantarum的发酵、有氧代谢与氧胁迫 | 第41-53页 |
| ·材料 | 第41-42页 |
| ·菌株 | 第41页 |
| ·培养基 | 第41页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-45页 |
| ·培养条件 | 第43页 |
| ·Lb.plantarum LA1的生物量、存活力、发酵液pH值测定 | 第43页 |
| ·Lb.plantarum LA1的代谢产物测定 | 第43页 |
| ·过氧化氢酶的定性分析 | 第43页 |
| ·过氧化氧酶的定量分析 | 第43-44页 |
| ·乳杆菌染色体提取 | 第44-45页 |
| ·结果 | 第45-51页 |
| ·外源血红素激活Lb.plantarum LA1的过氧化氢酶 | 第45页 |
| ·Lb.plantarum LA1的生长曲线及存活力 | 第45-46页 |
| ·Lb.plantarum LA1的糖代谢产物及发酵液pH值 | 第46-48页 |
| ·Lb.plantarum LA1有氧代谢产生H_2O_2 | 第48-49页 |
| ·氧胁迫对Lb.plantarum LA1的DNA损伤 | 第49-50页 |
| ·长期存放对有氧代谢的Lb.plantarum LA1存力的影响 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-53页 |
| 第三章 Lb.brevis的发酵与有氧代谢研究 | 第53-71页 |
| ·材料 | 第53-54页 |
| ·菌株及载体 | 第53页 |
| ·培养基 | 第53-54页 |
| ·试剂 | 第54页 |
| ·仪器 | 第54页 |
| ·方法 | 第54-58页 |
| ·培养条件 | 第54-55页 |
| ·E.coli感受态细胞的制备及转化 | 第55页 |
| ·乳杆菌感受态细胞制备及转化 | 第55-56页 |
| ·敲除载体pUC19-Erm~r-cydA的构建 | 第56-57页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367-cydA缺陷株的构建 | 第57-58页 |
| ·γ-氨基丁酸的纸层析 | 第58页 |
| ·结果 | 第58-70页 |
| ·外源血红素激活Lb.brevis ATCC 367的过氧化氢酶 | 第58-59页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367的生长曲线及存活力 | 第59-60页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367的糖代谢产物及发酵液PH值 | 第60-62页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367有氧代谢产生H_2O_2 | 第62页 |
| ·长期存放对有氧代谢Lb.brevis ATCC 367存活力的影响 | 第62-63页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367-cydA突变株的构建及其代谢特性 | 第63-67页 |
| ·有氧代谢对Lb.brevis ATCC 367生产Γ-氨基丁酸能力的影响 | 第67-70页 |
| ·讨论 | 第70-71页 |
| 第四章 Lb.brevis有氧代谢时乳酸向乙酸的转化途径 | 第71-81页 |
| ·材料 | 第71-72页 |
| ·菌株及载体 | 第71页 |
| ·培养基 | 第71页 |
| ·试剂 | 第71-72页 |
| ·仪器 | 第72页 |
| ·方法 | 第72-73页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367-pox和Lb.brevis ATCC 367-pdh突变株的构建 | 第72-73页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367pox和pdh基因的实时荧光定量PCR | 第73页 |
| ·结果 | 第73-79页 |
| ·突变株的PCR验证 | 第73-74页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367-pox突变株的代谢特性 | 第74-76页 |
| ·Lb.brevis ATCC 367-pdh突变株的代谢特性 | 第76-77页 |
| ·氧气和葡萄糖对pox和pdh基因的农达调控 | 第77-79页 |
| ·讨论 | 第79-81页 |
| 第五章 B.subtilis协助乳杆菌对抗氧胁迫 | 第81-95页 |
| ·材料 | 第81-82页 |
| ·菌株及载体 | 第81页 |
| ·培养基 | 第81-82页 |
| ·试剂 | 第82页 |
| ·仪器 | 第82页 |
| ·方法 | 第82-84页 |
| ·培养条件 | 第82页 |
| ·Lb.plantarum 或Lb.brevis与B.subtilis 168的活菌混合培养 | 第82-83页 |
| ·B.subtilis 168自裂解液的制备 | 第83页 |
| ·Lb.plantarum LA1在B.subtilis 168自裂解液中的培养 | 第83页 |
| ·B.subtilis 168在人工肠液中的自裂解 | 第83页 |
| ·B.subtilis 168自裂解液中血红素的检测 | 第83-84页 |
| ·Lb.plantarum LA1-kat突变株的构建 | 第84页 |
| ·结果 | 第84-94页 |
| ·Lb.plantarum-pL157及Lb.brevis-pL157的质粒验证 | 第84-85页 |
| ·Lb.plantarum或Lb.brevis与B.subtilis 168的活菌混合培养 | 第85-87页 |
| ·B.subltlis 168的自裂解 | 第87-89页 |
| ·B.subltlis 168自裂解液中血红素的验证 | 第89-90页 |
| ·Lb.plantarum LA1-kat突变株的构建 | 第90页 |
| ·B.subtilis 168自裂解液激活Lb.plantarum LA1过氧化氢酶 | 第90-91页 |
| ·B.subtilis 168自裂解液解除Lb.plantarum LA1所受氧胁迫 | 第91-93页 |
| ·B.subtilis 168自裂解液减少Lb.plantarum LA1的DNA损伤 | 第93-94页 |
| ·讨论 | 第94-95页 |
| 第六章 乳杆菌与B.subtilis混合型微生态制剂工艺创新初探 | 第95-101页 |
| ·材料 | 第95-96页 |
| ·菌株及载体 | 第95页 |
| ·培养基 | 第95页 |
| ·试剂 | 第95-96页 |
| ·方法 | 第96页 |
| ·Lb.casei BL23-pL157的电转化 | 第96页 |
| ·乳杆菌与B.subtilis 168的混合培养 | 第96页 |
| ·混合培养物中各活菌数的测定 | 第96页 |
| ·结果 | 第96-100页 |
| ·Lb.plantarum LA1、Lb.casei BL23静止培养与摇动培养生物量比较 | 第96-97页 |
| ·混合培养接种条件的优化 | 第97-98页 |
| ·混合培养物最佳收获时间点的确定 | 第98-100页 |
| ·讨论 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第114页 |
